Введение При моделировании рецептуры пищевой продукции специализированного назначения в последнее время отдается предпочтение использованию коротких биологически активных пептидов [1]. Выделение пептидов из белка проводится методами пищевой биотехнологии, а именно ферментного гидролиза белка и мембранной ультрафильтрации. Из одного и того же сырья путем регулирования биотехнологических параметров можно получить отличающиеся по последовательности аминокислот пептиды – действующие начала с различной функциональной направленностью. Следовательно, целесообразно экспериментально подбирать технологические режимы гидролиза белка (рН субстрата, температура и время гидролиза) с учетом концентрации протеолитического фермента и последующего выделения биопептидов [2]. 298 Kolberg N. A. et al. Food Processing: Techniques and Technology. 2022;52(2):296–309 Особенности свойств биоактивных пептидов как функционального источника питания обусловили интерес к выделению пептидных фракций или отдельных пептидов из ферментативных гидролизатов растительных и животных белков [3]. В литературе основное внимание уделяется получению пептидов путем ферментативного гидролиза белков глицинина, гороха, фасоли, амаранта и семян оливы [4–8]. R. A. M. Soares и др. разработана технология получения пептидов из белка амаранта путем гидролиза пепсином и трипсином с последующей фильтрацией гидролизата через мембраны с проницаемостью 3 кДа и очисткой с помощью колоночной хроматографии [7]. В результате гидролиза белка семян оливы алкалазой с последующей ультрафильтрацией гидролизата I. M. Prados и др. выделены тетрапептид, пентапептид и гексапептид [8]. Для увеличения выхода пептидов при ферментативном гидролизе белка используют обработку сырья ультразвуком и высоким гидростатическим давлением (HHP), а также внесением в субстрат молочнокислых бактерий. Молочнокислые бактерии могут как уменьшать количество нежелательных горьких пептидов, продуцируемых ферментативно гидролизованным белком, так и усиливать биоактивные эффекты пептидов [9]. Ферментативная экстракция при давлении от 50 до 200 МПа улучшает скорость извлечения биологически активных соединений из белка [10]. Это связано с тем, что давление может изменить структуру белка, заставляя его разворачиваться и обнажать сайт связывания, тем самым увеличивая скорость столкновения фермента с субстратом [11]. Это усиливает ферментативную активность, увеличивая скорость гидролиза белка и способствуя высвобождению активных пептидов [12]. Процесс гидролиза белка при повышении гидростатического давления усиливается [13]. В исследовании G.-W. Chen и M.-H. Yang выбраны наиболее эффективные протеазы из восьми широко используемых (протеаза N, протеаза A, пептидаза R, Умамизим G, протин SD-AY10 и NY100, алкалаза и нейтраза) для высвобождения пептидов с высокой ингибирующей активностью 3-гидрокси3-метил-глутарил-коэнзим А редуктазы (HMGR) из Streptomyces platensis [14]. Гидролиз проводили при температуре 50 °C в течение 6 ч. Установлено, что ингибирующая способность группы пептидов, выделенных пептидазой R, была выше в 1,6 раза по сравнению с другими используемыми ферментами. T. L. Q. Anh и др. разработана технология гидролиза белка сои [15]. Экспериментальным путем из трех ферментов (флавоурзим, протамекс и алкалаза) при одинаковом содержании выбран наиболее эффективный – флавоурзим. Установлено, что при сочетании термической обработки и ферментативного гидролиза выход пептидов достигал 61,44 ± 0,22 %. Это выше, чем при использовании только ферментативного гидролиза – 52,57 ± 0,27 %. Гидролизат сои с использованием флавоурзима достиг среднего молекулярного размера 3,19 кДа при следующих оптимальных условиях: концентрация фермента 16,09 Ед·г−1, рН 7,02, температура 45,8 °С, соотношение бобы:вода 1:3. D. M. Liu и др. утверждают, что при разработке способов получения белковых гидролизатов экономически эффективно использовать иммобилизованный фермент для гидролиза белка, поскольку иммобилизованный биокатализатор может быть извлечен в конце цикла гидролиза и повторно использован [16]. Кроме того, использование иммобилизированных ферментов позволяет осуществлять точный контроль степени реакции, исключая необходимость постгидролизной тепловой обработки для ферментативной инактивации и возможную модификацию структуры белка или пептида, вызванную этой обработкой. В исследовании L. S. Kudryashov и др. разработана технология микрокапсулирования фермента пепсина в псевдокипящем слое 10 % водного раствора мальтодекстрина [17]. Соотношение твердого вещества к жидкому выдерживали в пределах 10:1 ± 11,5:1. Ожижающим агентом, в том числе в режиме сушки, был воздух с комнатной температурой, прокачиваемый через аппарат. Опытным путем была получена линейная зависимость (P ≤ 0,05) средней толщины нанесения раствора мальтодекстрина на гранулу пепсина в зависимости от продолжительности нанесения. Определено, что через 2 мин обработки раствором мальтодекстрина на грануле пепсина образуется более ¼ толщины защитного поверхностного слоя от его среднего значения в конце процесса обработки, а после 6 мин – около 70 %. S. L. Tikhonov и др. предложена технология получения двухкомпонентного ферментного препарата путем последовательного микрокапсулирования пепсина и папаина в псевдокипящем слое из мальтодекстрина [18]. Определены рациональные параметры иммобилизации ферментов для толщины защитного покрытия 6 мкм: скорость воздушного потока с 10 %-м раствором мальтодекстрина в узком сечении конуса рабочей камеры составляет 0,17 м/с, время – 6 мин. Показано, что создание защитного покрытия из мальтодекстрина с толщиной 4 и 6 мкм позволяет сохранить протеолитическую активность ферментов более 6 месяцев хранения при температуре 0–2 °С. Экспериментальным путем доказана эффективность применения микрокапсулированного двухкомпонентного ферментного препарата в технологии тендеризации ветчинных изделий. Под действием микрокапсулированного двухкомпонентного ферментного препарата, хранившегося более 6 месяцев, рН мяса после 36 ч ферментации увеличивается 299 Кольберг Н. А. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2022. Т. 52. № 2. С. 296–309 на 7,3 %, водосвязывающая способность – на 8,5 %, влагоудерживающая способность – на 5,4 %, азот саркоплазматических белков к общему азоту – на 10,0 %, азот миофибриллярных белков к общему азоту – на 5,6 %, небелковый азот к общему азоту – на 4,8 %, полипептидный азот к общему азоту – на 3,3 %, напряжение среза ветчинных изделий уменьшается на 31,4 %. Также изменяется микроструктура: миофибриллы частично разрушены, отмечается выход ядер клеток в межклеточное пространство. Достоверных изменений показателей гидролиза белка под действием немикрокапсулированных ферментов папаина и пепсина, хранившихся более 6 месяцев, не отмечено. Пептиды, выделенные из Pleurotus ostreatus (POPE) с помощью энзиматического гидролиза пепсином, способны ингибировать окисление липидов и восстанавливающую способность металлов. В эксперименте на лабораторных мышах показано, что введение внутрь POPEP-III повышает активность супероксиддисмутазы в печени с 187,49 ± 19,81 до 233,35 ± 34,23 Ед/мг белка, глутатионпероксидазы (GSH-Px) с 84,01 ± 14,54 до 115,9 ± 16,57 Ед/мг белка (Р < 0,05). Пептиды предотвращали вызванные введением CCl4 окислительные гистологические изменения печени [19]. Пептид ACE-I, выделенный методом ультрафильтрации из ферментативного гидролизата мышечного белка Oligodon woodmasoni, снижает жизнеспособность клеток MCF-7 и обладает антиоксидантными свойствами [20]. Пептиды, полученные из морских источников, обладают противовоспалительным действием, что позволяет их использовать для лечения различных заболеваний, в частности желудочно-кишечного тракта, ревматоидного артрита и т. д. [21]. Пептиды, выделенные из белков животного происхождения, ингибируют активность ангиотензинпревращающего фермент, что позволяет использовать их для профилактики и лечения гипертонии [22, 23]. Одним из перспективных источников биологически активных пептидов является козье молоко. Гидролиз белков козьего молока осуществляют пепсином [24]. В исследовании R. J. S. de Castro и H. H. Sato предложена технология выделения пептидов из ферментативных гидролизатов изолятов соевого белка (SPI), сывороточного белка крупного рогатого скота (BWP) и яичного белка (EWP) с использованием Flavourzyme® 500L, индивидуально или в бинарных/ тройных смесях [25]. Полученные пептиды характеризовались синергическим антимикробным эффектом в отношении Staphylococcus aureus АТСС 6538 и задерживали рост бактерий на 19, 15 и ≥ 48 % соответственно. L. Shafiei Kaleybar и др. с помощью программного обеспечения Hex 8.0.0. предсказаны противоопухолевые свойства бактериального пептида SMANF2 на клеточных линиях A540 и HT-29 [26]. Результаты предсказали хорошие стереохимические, физико-химические и функциональные характеристики пептида SMANF2. Среди целевых белков клеточной линии A540 пептид SMANF2 показал самый высокий показатель стыковки – 539,12 кДж/моль с Bcl-2. С другой стороны, пептид показал самое высокое отрицательное значение E – 422,70 кДж/моль с Bcl-xL среди целевой линии клеток HT-29. Полученные данные свидетельствуют о противоопухолевых свойствах пептида SMANF2. В исследовании K. Raja и др. выделены пептиды из сырой кожи морского сома (Teuthis dussumieri) и исследована их противопухолевая эффективность на клеточной линии рака толстой кишки человека [27]. Фрагментация ДНК и результаты проточной цитометрии показали, что пептиды кожи морского сома индуцируют конденсацию хроматина и апоптотическую гибель клеток, а также нарушают клеточный цикл в фазе G0 /G1 на линии клеток рака толстой кишки. Широко известен тканевый иммуномодулятор глюкозаминилмурамилдипептид на основе пептидов. Он активирует клетки иммунной системы in vitro и усиливает иммунный ответ на различные антигены, в том числе микробные. Глюкозаминилмурамилдипептид после проведения доклинических и клинических испытаний был зарегистрирован под названием Ликопид® [28]. Тканевый препарат на основе катионного изопептида ε-поли-l-лизин (ε-PL) производится из незаменимой аминокислоты l-лизина и проявляет антимикробную активность против широкого спектра бактерий, дрожжей и грибов, нацеливаясь на клеточную мембрану. Является термостабильным и активным в различных пищевых матрицах [20]. Одним из перспективных источников биологически активных пептидов считается сумка Фабрициуса (фабрициева сумка или бурса). Это центральный орган иммунной системы у птиц, которая расположена на дорсальной поверхности клоаки, являясь ее дивертикулом. Этот лимфоэпителиальный орган состоит из долек с корковым и мозговым слоями. Среди эпителиальных клеток и ретикулоцитов бурсы располагаются большие и малые лимфоциты в виде плотных слоев. В дальнейшем из больших и малых лимфоцитов формируются плазматические клетки, синтезирующие антитела. Лимфоциты бурсы, являющиеся предшественниками плазмоцитов, получили название В-клеток. У млекопитающих созревание В-лимфоцитов происходит в костном мозге. Удаление бурсы у птиц приводит к угнетению биосинтеза антител. Экстракты бурс кур содержат биологические активные вещества, обладающие иммуностимулирующей активностью. Выделено 20 фракций из тимуса и ткани бурсы кур. Результаты исследования показали, что тимус и бурса имеют 300 Kolberg N. A. et al. Food Processing: Techniques and Technology. 2022;52(2):296–309 аналогичный состав белковых веществ [29]. Из бурсы получен иммунологически активный препарат пептидной природы. Установлено, что в системе in vivo и in vitro биологическая активность препарата направлена на усиление иммунологической реактивности [30]. Пептид BP5, выделенный из бурсы, эффективно подавляет маркеры окислительного стресса, включая оксид азота (NO), активные формы кислорода (АФК), перекисное окисление липидов и окисление белков, снижает экспрессию и активность индуцибельной синтазы оксида азота (iNOS) и способствует защитному антиоксидантному состоянию, активируя экспрессию и активность некоторых ключевых антиоксидантных и окислительно-восстановительных ферментов, включая глутатионпероксидазу (GPx), глутатионредуктазу (GR), супероксиддисмутазу (SOD) и каталазу (CAT). Этот подавляющий эффект на окислительный стресс сопровождается пониженной регулируемой экспрессией и активностью ядерного фактора каппа В (NF-ĸB) [31]. Пептид BP5, выделенный из фабрициевой сумки, стимулирует экспрессию белка р53 в клетках рака толстой кишки HCT116. Он обладает сильным ингибирующим действием на рост клеток и индуцирует апоптоз в клетках HCT116. BP5 останавливает клеточный цикл в фазе G1, увеличивая экспрессию p53 и p21 и уменьшая экспрессию комплекса циклина E1-CDK2. Лечение онкологических заболеваний с помощью пептида BP5 активирует стресс-опосредованный апоптотический путь эндоплазматического ретикулума (ER). Об этом свидетельствует усиление экспрессии сенсоров развернутого белкового ответа (UPR) (IRE1a, ATF6, PERK) и нижестоящих сигнальных молекул (XBP-1s, eIF2a, ATF4 и CHOP), а также изменение фенотипических изменений, индуцированных BP5 в нокдаунных клетках IRE1, ATF6 и PERK. Кроме того, вызванный BP5 стресс ER сопровождался накоплением цитозольного свободного Са2+ и внутриклеточного АФК. Применение BP5 приводит к увеличению экспрессии Bax, снижению экспрессии Bcl-2 и уменьшению δm. Это вызывает высвобождение цитохрома из митохондрий в цитоплазму и усиливает активность каспаз-9 и 3. Следовательно, BP5 обладает противоопухолевой способностью останавливать клеточный цикл в фазе G1 и вызывать ER-стресс/ митохондриально-опосредованный каспазозависимый апоптоз в клетках HCT116 [32]. H. Ahangari и др. изучено применение различных протеаз для получения биоактивных пептидов из универсальных источников белка [33]. Всестороннее знакомство с различными типами протеаз, методами их производства и очистки может помочь исследователям определить новые протеазы с улучшенными свойствами, учитывая ежегодный рост рынка. В патенте KR №1020080034712 описан способ получения ферментированной соевой композиции для получения пептида, имеющего высокую ACEингибирующую активность, путем ферментации соевых бобов при высокой температуре в течение короткого срока. Данная композиция содержит в своем составе пептиды низкомолекулярной массы, а также обладает антиокислительными, противогрибковыми и противоопухолевыми свойствами [34, 35]. Целью исследования является выделение пептидов из фабрициевой сумки и оценка их иммуннотропного действия на мышах различных линий с экспериментальным иммунодефицитом путем изучения морфофункционального состояния органов иммунопоэза (тимус и селезенка). Объекты и методы исследования Оценку степени гидролиза белка фабрициевой сумки проводили по содержанию аминного азота (ГОСТ Р 55479-2013). Для выделения пептидов из ферментативного гидролизата фабрициевой сумки цыплят-бройлеров использовали мембраны с проницаемостью до 43 кДа. Это связано с исследованием S. M. Martínez и др., в котором установлено, что выраженным иммуномодулирующим свойством обладают короткие пептиды с молекулярной массой менее 43 кДа [36]. Молекулярно-массовое распределение белков и пептидов оценивали с помощью электрофореза в полиакриламидом геле в присутствии додецилсульфата натрия по методу Лэммли. Для разделения белка использовали денатурирующий полиакриламидный гель (12 % разделяющий и 4 % фокусирующий) с 0,1 % SDS-Na. Гельэлектрофорез проводили на однократном электродном буфере с добавлением 0,1 % SDS-Na при 15 мА. Гель окрашивали 0,2 % Кумасси R250 (приготовленного на ледяной уксусной кислоте) при повышенной температуре в течение 7–10 мин. Затем трижды отмывали дистиллированной водой. Просмотр и фотографирование гелей проводили на УФ-трансиллюминаторе при длине волны излучения 312 нм. Сохранение и обработку данных осуществляли с помощью гельдокументирующей системы VitranPhoto. Оценку иммунотропных свойств бурсальных пептидов проводили с помощью модели экспериментального иммунодефицита. Работа выполнена на мышах-самцах линий C3H, C57BL/6, C57BL/10 и SJL 3-х месячного возраста, содержащихся в стандартных условиях вивария. Все манипуляции с животными были осуществлены в соответствии с Директивой Совета ЕС 2010/63/EU и одобрены этическим комитетом ИИФ УрО РАН. Экспериментальный иммунодефицит моделировался путем введения однократно и внутрибрюшинно циклофосфамида (Эндоксан®, Бакстер Онкология ГмбХ, Германия) в дозе 200 мг/кг 301 Кольберг Н. А. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2022. Т. 52. № 2. С. 296–309 массы тела животного в виде раствора со стерильным хлоридом натрия 0,9 % в концентрации 20 мг/мл. Контрольной группе мышей этих же линий вводился физиологический раствор хлорида натрия 0,9 % в аналогичном объеме. Для расчета дозы препарата проводился замер массы животных до воздействия. Пептиды вводили на протяжении 7 дней после инъекции циклофосфамида, разведенной в 0,1 мл 0,9 % раствора хлорида натрия, внутрибрюшинно в дозе 0,1 мг/20 г массы животного. Контрольная группа мышей получала физиологический раствор хлорида натрия 0,9 % в аналогичном объеме. Мыши выводились из эксперимента на 8 сутки после моделирования иммунодефицита под наркозом (за 15–20 мин до эвтаназии вводился 2 % Ксилазин (1 мл/кг) и Золетил-100 (0,3 мл/кг) внутримышечно). Для гистологического исследований проводили забор тимуса и селезенки. Образцы тимуса и селезенки фиксировали в 10 % забуференном формалине 24–48 ч. Гистологическую проводку материала осуществляли при помощи автоматического тканевого процессора Leica TP1020. Материал обезвоживали в спиртах возрастающей концентрации и подвергали действию ксилола с последующей пропиткой парафином. Заливку образцов органов в парафин проводили при помощи станции заливки Leica EG1160. Готовые парафиновые блоки были использованы на следующих этапах работы для гистологического исследования. Парафиновые срезы тимуса и селезенки толщиной 3–5 мкм окрашивали гематоксилином и эозином. Иммуногистохимическое окрашивание применялось для идентификации CD45+ (пан-лейкоцитарный маркер), CD20 (маркер B-лимфоцитов) и CD3 (маркер Т-лимфоцитов) клеток в тимусе и селезенке экспериментальных животных. В исследовании использовались антитела, приведенные в таблице 1. При изготовлении срезов тканей для ИГХокрашивания использовали предметные стекла с адгезивной поверхностью Snowcoat X-tra (Leica Biosystems, США). Срезы подсушивали и подвергали депарафинизации, регидратации и промывке в PBSTween 20 (фосфатно-солевой буфер, рН = 7,2–7,4). Антигенные детерминанты после формалиновой фиксации оказываются недоступными для антител из-за образования дополнительных сшивок между участками белков. Поэтому по рекомендации производителя перед ИГХ-окрашиванием необходимо проводить демаскировку антигенов. В данном исследовании, основываясь на рекомендациях производителя антител к CD3, применялась ферментативная (трипсиновая) демаскировка. Для этого использовали 0,05 % раствор трипсина (SigmaAldrich, Inc.) в дистиллированной воде с добавлением 1 % раствора хлорида кальция. Перед инкубацией с раствором трипсина сте́ кла со срезами нагревали до 37 °С в дистиллированной воде в термостате. Далее на срезы наносили раствор трипсина и помещали их во влажную камеру. Инкубацию с трипсином проводили при 37 °С в течение 15 мин, после чего срезы промывали в холодной дистиллированной воде с целью остановить ферментативную реакцию. Затем осуществляли промывку в PBS-Tween 20. Дальнейшая процедура окрашивания одинакова для всех идентифицируемых антигенов. Идентификация антигенных детерминант осуществлялась непрямым пероксидазным методом окрашивания. Cрезы инкубировали с соответствующими первичными антителами при температуре 37 °С в течение 1 ч во влажной камере, после чего промывали дважды в PBS-Tween 20. Затем производили блокировку эндогенной пероксидазы с использованием коммерческого блокирующего раствора Peroxidase Block (Novocastra, Великобритания) и промывку в двух сменах PBS-Tween 20. Далее инкубировали срезы с соответствующими вторичными антителами при температуре 37 °С в течение 30 мин во влажной камере, после чего промывали дважды в PBS-Tween 20. Для визуализации антигенреактивных клеток использовали тест-систему Novolink Polymer Detection System (Novocastra, Великобритания). Антигенреактивные клетки контрастировали хромогенным субстратом (3,3-диаминобензидин в буферном растворе). DAB-позитивные клетки тимуса и селезенки идентифицировали по коричневому гранулярному окрашиванию цитоплазмы. Проводили Таблица 1. Перечень антител для исследования Table 1. Antibodies Изучаемый антиген Первичное антитело: клон, разведение, производитель Вторичное антитело: клон, разведение, производитель CD45 CD45 Polyclonal Antibody, 1:100, PA5-96061, Invitrogen, Thermo Fisher Scientific, США Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Biotin, поликлональное, 1:1000, 65-6140, Thermo Fisher Scientific, США CD20 CD20 Polyclonal Antibody, 1:300, PA5-16701, Invitrogen, Thermo Fisher Scientific, США CD3 Anti-CD3, T Cell antibody produced in rabbit, polyclonal, 1:200, C7930, Sigma-Aldrich, Merck, США 302 Kolberg N. A. et al. Food Processing: Techniques and Technology. 2022;52(2):296–309 постановку позитивного тканевого контроля и негативного контроля на тех же срезах исследуемой группы. Анализ изображений проводили на микроскопе марки Leica DM2500 с видеокамерой Leica DFC420. Оценка исследуемых показателей проводилась с помощью пакета прикладных морфометрических программ ВидеоТесТ-Морфология 5.0. На гистологических препаратах определяли площадь мозгового и коркового вещества (тимус), соотношение красной и белой пульпы (селезенка), общую клеточность тимуса и селезенки с последующим пересчетом данных на 1 мм2 . Морфометрию зон фолликулов селезенки (площади реактивного центра, мантийной зоны, маргинальной (краевой) зоны) проводили по всей площади препарата, данные представлены в мкм2 . Оценку морфометрических показателей и подсчет количества CD45+, CD20+ и CD3+ клеток производили при увеличении объектива микроскопа 40× в 10 полях зрения. На основе полученных данных производили подсчет среднеарифметических значений, которые подвергали статистической обработке. Анализ данных выполнен в пакете статистических программ STATISTICA 6.0 (StatSoft, Inc. 2001). Данные представлены в виде среднего арифметического M ± стандартная ошибка среднего m. Для проверки гипотезы об однородности двух независимых выборок использовали непараметрический критерий Манна-Уитни (Mann-Whitney Utest). При проверке статистических гипотез использовали 5 % уровень значимости. Результаты и их обсуждение Технология гидролиза белков фабрициевой сумки и выделения пептидов включала следующие этапы: промывка сырья проточной водой в течение 10 мин при температуре 16–18 °С; измельчение на лабораторной мельнице в течение 3 мин при частоте вращения ножей 2400 об/мин; гомогенизация при скорости вращения насадки 600 об/мин при температуре 4 °С в течение 60 мин; смешивание с дистиллированной водой в соотношении 1:1, 1:3 и 1:5; нагревание до температуры оптимума активности фермента Papain (КФ 3.4.22.2) (36 °С); внесение фермента, растворенного в фосфатнобуферном растворе с рН 6,0, гидролиз в течение 6 ч. Для получения гидролизата в качестве фермента был выбран папаин из-за его действия на белки фабрициевой сумки. В результате этого продуктами гидролиза являются пептиды и аминокислоты. Также учитывался оптимум активности фермента – рН 6,0, что соответствует рН сырья. Эффективность гидролиза оценивали по содержанию аминного азота в гидролизате. Для определения оптимальной дозировки папаина и продолжительности процесса гидролиза сырье обрабатывали ферментным препаратом в количестве 0,10, 0,15 и 0,20 % к массе. Контроль процесса осуществляли по накоплению в среде аминного азота, отбор проб проводили 1 раз в час. Содержание аминного азота в гидролизате фабрициевой сумки при разных концентрациях папаина приведено на рисунке 1. Наилучшие результаты получены при концентрациях папаина, растворенного в фосфатнобуферном растворе, 0,15 и 0,20 % к основному сырью (фабрициева сумка). Содержание аминного азота в гидролизате фабрициевой сумки при концентрации папаина 0,15 % к основному сырью составляет 389 мг/100 г. Это выше на 18 % по сравнению с концентрацией папаина 0,10 % от массы сырья. При повышении концентрации папаина до 0,20 % отмечается тенденция к увеличению образования аминного азота – 396 мг/100 г. Следовательно, целесообразно использовать для гидролиза фабрициевой сумки концентрацию папаина 0,15 %. Бурсальные пептиды (BP5 и ВР11) с молекулярной массой 28–18 кДа обладают наибольшей биологической активностью, стимулируют выработку антител и предупреждают иммунодефицитное состояние, что установлено в исследованиях [31, 32]. В исследовании L. Xiao и др. доказано, что бурсальный пептид (BP11) с молекулярной массой 16–28 кДа регулирует дифференцировку В-клеток, в том числе увеличивает процент незрелых и зрелых В-клеток в БМ-клетках, совместно культивируемых с IL-7 [37]. BP11 оказывает иммуномодулирующее действие на антигенспецифические иммунные реакции у мышей BALB/c, иммунизированных вакциной с инактивированным вирусом влияния (AIV, подтип H9N2), включая усиление продукции AIV-специфических антител и цитокинов. BP11 Рисунок 1. Содержание аминного азота в гидролизате фабрициевой сумки при разных концентрациях папаина Figure 1. Amine nitrogen in the bursa fabricii hydrolysate at different concentrations of papain 320 330 340 350 360 370 380 390 400 Содержание аминного азота, мг/100 г 0,10 0,15 0,20 Концентрация папаина, % 320 330 340 350 360 370 380 390 400 Содержание аминного азота, мг/100 г 0,10 0,15 0,20 Концентрация папаина, % 303 Кольберг Н. А. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2022. Т. 52. № 2. С. 296–309 стимулирует выработку антител. Следовательно, BP11 важен для развития иммунной системы. Y. Yin и др. установлено, что BP11 препятствует морфологическим изменениям и ослабляет экспрессию фенотипических маркеров (молекул MHC II, CD40, CD80 и CD86) в ЛПС-индуцированных ДК [38]. BP5 восстанавливает сниженное поглощение FITCдекстрана в обработанных ЛПС ДК. Следовательно, применение BP5 профилактирует иммунодефицитное состояние путем отмены иммунной функции DCs. В таблице 2 представлено относительное содержание молекулярного распределения фракций пептидов из ферментативного гидролизата фабрициевой сумки при гидромодуле 1:3, температуре 35 °С и времени гидролиза 6 ч в зависимости от концентрации папаина 0,10–0,20 % к основному сырью. Из данных таблицы 2 следует, что молекулярная масса пептидов из ферментативного гидролизата фабрициевой сумки распределяется в разных значениях и зависит от концентрации папаина. При концентрации 0,15 % папаина молекулярная масса пептидов составила от 27 до 18 кДа (73 %). При концентрации 0,10 и 0,20 % папаина процентное отношение фракций белка составило 62 и 57 % соответственно. Следовательно, наиболее эффективным для получения ферментативного гидролизата фабрициевой сумки является использование 0,15 % концентрации папаина при гидролизе сырья. В таблице 3 представлено молекулярное распределение фракций пептидов из ферментативного гидролизата фабрициевой сумки при 0,15 % концентрации папаина, гидромодуле 1:3 и времени гидролиза 6 ч в зависимости от температуры гидролиза. Из данных таблицы 3 следует, что температура гидролиза оказывает влияние на распределение молекулярной массы фракций пептидов из ферментативного гидролизата фабрициевой сумки. При температуре 36 °С количество ферментативного гидролизата в процентном отношении с молекулярной массой от 27 до 18 кДа было максимальным и составило 85 %, при температуре 35 и 37 °С – 63 и 67 % соответственно. Следовательно, целесообразно проводить гидролиз сырья для выделения получения фракций с молекулярной массой 23–36 кДа при температуре 36 °С. В таблице 4 представлено относительное содержание молекулярного распределения фракций пептидов из ферментативного гидролизата фабрициевой сумки при 0,15 % концентрации папаина, температуры гидролиза 36 °С и времени гидролиза 6 ч в зависимости от гидромодуля. Изменение гидромодуля при гидролизе сырья оказало влияние на распределение молекулярной массы ферментативного гидролизата фабрициевой сумки. Наибольшее количество пептидов ферментативного гидролизата фабрициевой сумки с молекулярной массой 27–18 кДа отмечено при Таблица 2. Относительное содержание молекулярного распределения фракций ферментативного гидролизата фабрициевой сумки, % Table 2. Molecular distribution of fractions of the enzymatic bursa fabricii hydrolyzate, % Молекулярная масса, кДа Концентрация папаина, % 0,10 0,15 0,20 30–27 22 9 29 27–18 62 73 57 Менее 18 16 18 14 Таблица 3. Относительное содержание молекулярного распределения фракций пептидов из ферментативного гидролизата фабрициевой сумки, % Table 3. Molecular distribution of peptide fractions of the enzymatic bursa fabricii hydrolyzate, % Молекулярная масса, кДа Температура гидролиза, °С 35 36 37 30–27 16 5 20 27–18 63 85 67 Менее 18 21 10 13 Таблица 4. Относительное содержание молекулярного распределения фракций пептидов из ферментативного гидролизата фабрициевой сумки при разном гидромодуле, % Table 4. Molecular distribution of peptide fractions of the enzymatic bursa fabricii hydrolysate at different hydraulic modules, % Молекулярная масса, кДа Гидромодуль 1:1 1:3 1:5 30–27 38 8 47 27–18 52 78 41 Менее 18 10 14 12 Таблица 5. Относительное содержание молекулярного распределения фракций пептидов из ферментативного гидролизата фабрициевой сумки в зависимости от времени гидролиза, % Table 5. Molecular distribution of peptide fractions of the enzymatic bursa fabricii hydrolysate at hydrolysis time, % Молекулярная масса, кДа Время гидролиза, ч 4 6 8 30–27 17 11 36 27–18 75 82 56 Менее 18 8 7 9 304 Kolberg N. A. et al. Food Processing: Techniques and Technology. 2022;52(2):296–309 гидромодуле 1:3 и составило 78 %, при гидромодуле 1:1 и 1:5 – 52 и 41 % соответственно. Таким образом, наиболее эффективно проводить гидролиз сырья при соотношении фабрициева сумка:дистиллированная вода 1:3. В таблице 5 представлено относительное содержание молекулярного распределения фракций ферментативного гидролизата фабрициевой сумки при 0,15 % концентрации папаина, температуре 36 °С и гидромодуле 1:3 в зависимости от времени гидролиза сырья. Из данных таблицы 5 следует, что максимальное процентное содержание пептидов их ферментативного гидролизата фабрициевой сумки с молекулярной массой 27–18 % отмечается при времени гидролиза сырья 6 ч и составляет 82 %, при 4 и 8 ч – 75 и 56 % соответственно. Представленная технология гидролиза фабрициевой сумки позволяет выделить пептиды BP5 и BP11 с молекулярной массой 27–18 кДа. По данным [37, 39] указанные пептиды регулируют диффенциацию В-клеток, активизирующих выработку антител и неспецифический иммунный ответ. Проведенная оценка морфометрических изменений в тимусе не выявила значительного изменения площади коркового и мозгового вещества тимуса у мышей линий С3H, C57BL/6 и C57BL/10 после введения пептидов. Только у иммунодефицитных мышей линии SJL на фоне введения пептидов отмечается снижение площади коркового вещества относительно контрольной группы (табл. 6). Это может свидетельствовать о снижении лимфоцитопоэтической функции, подавлении митотической активности клеток, что является стереотипным ответом тимуса на различные стрессорные и антигенные воздействия. Корковое вещество тимуса активнее отвечает на различные воздействия, чем мозговое, которое является более стабильной зоной тимуса. Корково-мозговое соотношение в тимусе позвоночных определяет процессы, связанные с пролиферацией, созреванием и рециркуляцией лимфоцитов. Данные иммуногистохимического исследования тимуса не выявили значимых изменений содержания CD45+ и CD3+ клеток в корковом и мозговом веществе из расчета на единицу площади (табл. 7 и 8). Таким образом, бурсальные пептиды не вызывают относительного снижения общей клеточности тимуса в корковом и мозговом веществе. В корковом веществе тимуса мышей линии SJL отмечается снижение содержания CD3+ клеток. Это Таблица 6. Соотношение мозгового и коркового вещества тимуса Table 6. Medulla vs. cortex of the thymus Линия Группа S мозгового вещества, мм2 S коркового вещества, мм2 S мозгового вещества/S коркового вещества С3Н Контроль 0,431 ± 0,114 0,850 ± 0,114 0,518 ± 0,132 Бурсальные пептиды 0,272 ± 0,070 0,589 ± 0,137 0,442 ± 0,052 С57BL/6 Контроль 0,612 ± 0,128 2,701 ± 0,584 0,381 ± 0,186 Бурсальные пептиды 0,626 ± 0,124 3,514 ± 0,524 0,175 ± 0,017 С57BL/10 Контроль 0,292 ± 0,081 1,474 ± 0,360 0,169 ± 0,027 Бурсальные пептиды 0,348 ± 0,147 1,397 ± 0,465 0,195 ± 0,064 SJL Контроль 0,208 ± 0,027 1,355 ± 0,068 0,163 ± 0,031 Бурсальные пептиды 0,153 ± 0,043 0,389 ± 0,091* 0,479 ± 0,087* * Различия с контролем достоверны (P < 0,05). * Differences are significant at P < 0.05. Таблица 7. Плотность распределения CD-45+ клеток в мозговом и корковом веществе тимуса Table 7. Distribution density of CD-45+ cells in the thymus medulla and cortex Линия Группа CD-45+ клетки в 1 мм2 коркового вещества CD-45+ клетки в 1 мм2 мозгового вещества С3Н Контроль 109734 ± 6356 76091 ± 2738 Бурсальные пептиды 102740 ± 8245 73818 ± 4473 С57BL/6 Контроль 112504 ± 8525 87595 ± 2113 Бурсальные пептиды 129980 ± 6985 83470 ± 1586 С57BL/10 Контроль 117600 ± 5481 79153 ± 1898 Бурсальные пептиды 116360 ± 6558 72227 ± 3418 SJL Контроль 134802 ± 5261 88618 ± 1760 Бурсальные пептиды 116116 ± 8861 80428 ± 7519 305 Кольберг Н. А. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2022. Т. 52. № 2. С. 296–309 можно трактовать как преходящее снижение скорости созревания Т-лифоцитов у данной линии мышей в ответ на введение бурсальных пептидов. Кроме того, у мышей линии C57BL/10 отмечается снижение числа CD3+ клеток в мозговом веществе тимуса в экспериментальной группе, что также указывает на угнетение процессов созревания Т-лимфоцитов. Проведенные исследования свидетельствуют о том, что в ответ на введение бурсальных пептидов у мышей линии С3Н достоверных изменений морфометрических показателей селезенки не отмечается (табл. 9). При этом содержание CD3+ клеток в белой и красной пульпе снижается, что может свидетельствовать об угнетении созревания Т-лимфоцитов. У мышей линии С57BL/6 с ЦФА-индуцированным иммунодефицитом после введения бурсальных пептидов определяется достоверное снижение площади красной пульпы в единице площади (табл. 9). Также в белой пульпе мышей данной линии отмечается уменьшение площади реактивного Таблица 8. Плотность распределения CD3+ клеток в мозговом и корковом веществе тимуса Table 8. Distribution density of CD3+ cells in the thymus medulla and cortex Линия Группа CD3+ клетки в 1 мм2 коркового вещества CD3+ клетки в 1 мм2 мозгового вещества С3Н Контроль 24104,98 ± 1967,59 15298,73 ± 668,79 Бурсальные пептиды 21025,19 ± 1221,71 14893,36 ± 856,32 С57BL/6 Контроль 5312,83 ± 738,60 6315,93 ± 1504,53 Бурсальные пептиды 4267,11 ± 790,96 11648,75 ± 2263,74 С57BL/10 Контроль 26405,11 ± 1812,26 27436,39 ± 601,70 Бурсальные пептиды 23012,43 ± 1004,94 14960,80 ± 1517,91* SJL Контроль 29763,96 ± 1311,54 19809,75 ± 2756,67 Бурсальные пептиды 17777,05 ± 1003,71* 17558,58 ± 770,34 * Различия с контролем достоверны (P < 0,05). * Differences are significant at P < 0.05. Таблица 9. Характеристика красной и белой пульпы селезенки экспериментальных групп Table 9. Red and white spleen pulp in the experimental groups Линия Группа S белой пульпы, мм2 S красной пульпы, мм2 S белой пульпы/ S красной пульпы Количество лимфоидных фолликулов/ 1 мм2 паренхимы С3Н Контроль 0,729 ± 0,059 5,366 ± 0,715 0,135 ± 0,007 1,413 ± 0,209 Бурсальные пептиды 0,603 ± 0,077 5,943 ± 0,317 0,103 ± 0,013 1,606 ± 0,125 С57BL/6 Контроль 1,271 ± 0,097 6,467 ± 0,081 0,303 ± 0,031 2,088 ± 0,120 Бурсальные пептиды 1,453 ± 0,098 5,503 ± 0,202* 0,267 ± 0,026 2,230 ± 0,165 С57BL/10 Контроль 2,147 ± 0,610 4,604 ± 0,466 0,576 ± 0,236 2,504 ± 0,616 Бурсальные пептиды 1,997 ± 0,406 4,139 ± 0,552 0,569 ± 0,169 2,418 ± 0,366 SJL Контроль 0,276 ± 0,075 5,336 ± 0,623 0,063 ± 0,025 0,725 ± 0,189 Бурсальные пептиды 0,941 ± 0,163* 6,839 ± 0,253 0,139 ± 0,024 1,226 ± 0,227 * Различия с контролем достоверны (P < 0,05). * Differences are significant at P < 0.05. центра, по сравнению с контролем (табл. 10), при значительном повышении количества CD3+ клеток в красной и белой пульпе (табл. 10). У иммунодефицитных мышей линии С57BL/10 после введения бурсальных пептидов отмечается увеличение площади реактивного центра в белой пульпе селезенки (табл. 10). Это указывает на активацию антиген-зависимой пролиферации и дифференцировки В-лимфоцитов. При этом количество СD45+ и CD3+ клеток в белой и красной пульпе не меняется (табл. 11 и 12). Проведенные исследования установили, что у мышей линии SJL введение бурсальных пептидов после индукции иммунодефицита вызывает повышение площади белой пульпы по сравнению с группой контроля (табл. 9). Иммуногистохимическое окрашивание на CD20 тимуса и селезенки мышей различных линий не выявило позитивно-окрашенных клеток ни в одной из групп животных. Принимая во внимание позитивное окрашивание в контрольной ткани 306 Kolberg N. A. et al. Food Processing: Techniques and Technology. 2022;52(2):296–309 с использованием того же перечня реагентов, а также иммунореактивность мышей для данного вида антител, гарантированную производителем, можно предположить, что введение циклофосфамида могло вызвать исчезновение CD20+ клеток в тимусе и селезенке исследуемых мышей. Красная пульпа селезенки и B-зависимые зоны более активно запустевают в ответ на введение циклофосфамида, а T-зависимые области остаются интактными. Введение ЦФА до антигенного стимула длительно подавляет образование антител, но не влияет на предшественники активированных T-клеток. Выявленный факт Таблица 10. Морфометрия зон лимфоидных узелков селезенки Table 10. Morphometry of spleen lymphoid nodules Линия Группа S реактивного центра, мкм2 S мантийной зоны, мкм2 S краевой зоны, мкм2 С3Н Контроль 8493 ± 1532 44478 ± 4694 29989 ± 5695 Бурсальные пептиды 7474 ± 649 37679 ± 5247 18605 ± 2047 С57BL/6 Контроль 8493 ± 1532 44478 ± 4694 21795 ± 2377 Бурсальные пептиды 3475 ± 333* 36447 ± 2681 23768 ± 3909 С57BL/10 Контроль 5160 ± 485 51260 ± 8860 39063 ± 6487 Бурсальные пептиды 9362 ± 381* 82318 ± 9172 53587 ± 8485 SJL Контроль 4586 ± 1805 13509 ± 4024 11158 ± 4535 Бурсальные пептиды 5046 ± 580 33705 ± 8990 19836 ± 4462 * Различия с контролем достоверны (P < 0,05). * Differences are significant at P < 0.05. Таблица 11. Плотность распределения CD-45+ клеток в красной и белой пульпе селезенки Table 11. Distribution density of CD-45+ cells in the red and white spleen pulp Линия Группа CD-45+ клетки в 1 мм2 красной пульпы CD-45+ клетки в 1 мм2 белой пульпы С3Н Контроль 55649 ± 2391 73258 ± 3076 Бурсальные пептиды 62653 ± 3151 70156 ± 1393 С57BL/6 Контроль 74978 ± 3609 85269 ± 4780 Бурсальные пептиды 74871 ± 8815 89391 ± 2937 С57BL/10 Контроль 72377 ± 5503 66610 ± 2870 Бурсальные пептиды 65660 ± 2644 64485 ± 3264 SJL Контроль 55649 ± 2391 76308 ± 5433 Бурсальные пептиды 54773 ± 4309 64851 ± 2822 * Различия с контролем достоверны (P < 0,05). * Differences are significant at P < 0.05. Таблица 12. Плотность распределения CD3+ клеток в белой и красной пульпе селезенки Table 12. Distribution density of CD3+ cells in the red and white spleen pulp Линия Группа CD3+ клетки в 1 мм2 красной пульпы CD3+ клетки в 1 мм2 белой пульпы С3Н Контроль 8631,08 ± 617,54 32479,66 ± 557,87 Бурсальные пептиды 5036,93 ± 644,68* 19206,88 ± 2151,64* С57BL/6 Контроль 2667,30 ± 398,51 2873,16 ± 851,03 Бурсальные пептиды 11435,77 ± 816,86* 27924,50 ± 3418,57* С57BL/10 Контроль 9542,91 ± 605,16 28427,09 ± 1218,18 Бурсальные пептиды 10004,49 ± 386,81 21332,01 ± 2705,62 SJL Контроль 4774,77 ± 617,44 25365,99 ± 2715,59 Бурсальные пептиды 3491,49 ± 333,46 28718,93 ± 1399,39 * Различия с контролем достоверны (P < 0,05). * Differences are significant at P < 0.05. 307 Кольберг Н. А. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2022. Т. 52. № 2. С. 296–309 требует проведения дополнительных исследований с возможной заменой определяемого маркера В-лимфоцитов и проверкой используемого первичного антитела в других группах и тканях. Обращают на себя внимание ученых особенности реакции на введение бурсальных пептидов у разных линий мышей. Сочетание с различной чувствительностью исследуемых линий мышей на введение циклофосфамида, отмечаемой в работах различных авторов и наших предварительных исследованиях, затрудняет выявление общих закономерностей иммунотропного действия исследуемых пептидов. Резкого снижения или роста показателей в ответ на введение бурсальных пептидов не отмечается. Иммуноцитотоксические эффекты отсутствуют. Большинство показателей не отличается от контрольных значений. В случае выраженных отличий показателей от контрольной группы представляет интерес оценка восстановительных процессов в динамике. Выводы Разработана технология получения коротких пептидов с молекулярной массой 28–18 кДа из ферментативного гидролизата фабрициевой сумки цыплят-бройлеров, включающая промывку сырья, измельчение, гомогенизацию, гидролиз и ультрафильрацию. Эффективность гидролиза определена по содержанию аминного азота в гидролизате. Установлена рациональная концентрация фермента папаина – 0,15 % от массы сырья. Определены рациональные технологические параметры гидролиза: концентрация папаина 0,15 %, температура 36 °С, гидромодуль 1:3, время гидролиза 6 ч. На основании гистологических исследований расчета площади мозгового и коркового вещества тимуса, соотношения красной и белой пульпы селезенки, общей клеточности тимуса и селезенки, морфометрии зон фолликулов селезенки и подсчета количества CD45+, CD20+ и CD3+ клеток иммунодефицитных мышей доказано снижение иммуноцитотоксических эффектов на фоне введения внутрь пептидов в дозе 0,1 мг/20 г массы животного, разведенных в 0,1 мл 0,9 % раствора хлорида натрия. Из проведенных исследований биологической активности выделенных пептидов с использованием экспериментально обоснованных технологических режимов ферментного гидролиза фабрициевой сумки следует, что полученные пептиды после проведения дополнительных исследований можно отнести к перспективным пищевым ингредиентам. Создание и внедрение в производство с использованием пептидов специализированных пищевых продуктов, включающих действующее начало, в виде пептидов формирует предпосылки для становления нового направления фармаконутрициологии, сочетающего не только профилактику и лечение болезней различной этиологии, но и изучение механизма развития патологических процессов. Это позволит определить необходимость применения тех или иных пептидов. Развитие указанного направления будет эффективным и безопасным методом сохранения здоровья человека. Критерии авторства Авторы в равной степени принимали участие в исследованиях и оформлении рукописи. Конфликт интересов Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

1. Kerksick CM, Arent S, Schoenfeld BJ, Stout JR, Campbell B, Wilborn CD, et al. International society of sports nutrition position stand: nutrient timing. Journal of the International Society of Sports Nutrition. 2017;14(1). https://doi.org/10.1186/s12970-017-0189-4

2. Banihashemi SA, Nikoo M, Ghasempour Z, Ehsani A. Bioactive peptides fractions from traditional Iranian Koopeh cheese; lactic fermentation products. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2020;29. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2020.101798

3. Meinlschmidt P, Sussmann D, Schweiggert-Weisz U, Eisner P. Enzymatic treatment of soy protein isolates: effects on the potential allergenicity, technofunctionality, and sensory properties. Food Science and Nutrition. 2016;4(1):11-23. https://doi.org/10.1002/fsn3.253

4. Pak VV, Koo MS, Kasymova TD, Kwon DY. Isolation and identification of peptides from soy 11S-globulin with hypocholesterolemic activity. Chemistry of Natural Compounds. 2005;41(6):710-714. https://doi.org/10.1007/s10600-006-0017-6

5. Marques MR, Fontanari GG, Pimenta DC, Soares-Freitas RM, Arêas JAG. Proteolytic hydrolysis of cowpea proteins is able to release peptides with hypocholesterolemic activity. Food Research International. 2015;77:43-48. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2015.04.020

6. Ashraf J, Liu L, Awais M, Xiao T, Wang L, Zhou X, et al. Effect of thermosonication pre-treatment on mung bean (Vigna radiata) and white kidney bean (Phaseolus vulgaris) proteins: Enzymatic hydrolysis, cholesterol lowering activity and structural characterization. Ultrasonics Sonochemistry. 2020;66. https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2020.105121

7. Soares RAM, Mendonça S, de Castro LÍA, Menezes ACCCC, Arêas JAG. Major peptides from amaranth (Amaranthus cruentus) protein inhibit HMG-CoA reductase activity. International Journal of Molecular Sciences. 2015;16(2):4150-4160. https://doi.org/10.3390/ijms16024150

8. Prados IM, Plaza M, Marina ML, García M. Concepción evaluation of the relationship between the peptide profile and the lipid-lowering properties of olive seeds hydrolysates as a tool for tuning hypocholesterolemic functionality. Food and Function. 2020;11(6):4973-4981. https://doi.org/10.1039/d0fo00576b

9. Tsai J-S, Chen T-J, Pan BS, Gong S-D, Chung M-Y. Antihypertensive effect of bioactive peptides produced by protease-facilitated lactic acid fermentation of milk. Food Chemistry. 2008;106(2):552-558. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2007.06.039

10. Chen GW, Liao KJ. Method of combining pressure and enzyme to extract hydrolysate of animal-derived composition. Taiwan Patent No. TWI600379B. 2017.

11. Eisenmenger MJ, Reyes-De-Corcuera JI. High pressure enhancement of enzymes: A review. Enzyme and Microbial Technology. 2009;45(5):331-347. https://doi.org/10.1016/j.enzmictec.2009.08.001

12. Marciniak A, Suwal S, Naderi N, Pouliot Y, Doyen A. Enhancing enzymatic hydrolysis of food proteins and production of bioactive peptides using high hydrostatic pressure technology. Trends in Food Science and Technology. 2018;80:187-198. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2018.08.013

13. Lin YH, Li CH, Lin CH, Yan YZ, Chuang YY, Chen GW. Application and development status of an ultra-high pressure processing technique in aquatic food. Fish. Ext. Rep. 2017;47:17-32.

14. Chen G-W, Yang M-H. Production and purification of novel hypocholesterolemic peptides from lactic fermented Spirulina platensis through high hydrostatic pressure-assisted protease hydrolysis. Catalysts. 2021;11(8). https://doi.org/10.3390/catal11080873

15. Anh TLQ, Hoa NTQ, Nguyen PDT, Van Thanh H, Nguyen PB, Anh LTH, et al. Soybean protein extraction by alcalase and flavourzyme, combining thermal pretreatment for enteral feeding product. Catalysts. 2020;10(8). https://doi.org/10.3390/catal10080829

16. Liu D-M, Chen J, Shi Y-P. Advances on methods and easy separated support materials for enzymes immobilization. TrAC - Trends in Analytical Chemistry. 2018;102:332-342. https://doi.org/10.1016/j.trac.2018.03.011

17. Kudryashov LS, Uzakov YaM, Tikhonov SL, Tikhonova NV, Diachkova AV. Microencapsulation of proteolytic enzymes for industrial application. News of the Academy of Sciences of the Republic of Kazakhstan. Series of Geology and Technical Sciences. 2020;3(441):161-169. https://doi.org/10.32014/2020.2518-170X.67

18. Tikhonov SL, Tikhonova NV, Kudryashov LS, Kudryashova OA, Moskovenko NV, Tretyakova IN. Efficiency of Microencapsulation of Proteolytic Enzymes. Catalysts. 2021;11(11). https://doi.org/10.3390/catal11111270

19. Zhang L, Lu Y, Feng X, Liu Q, Li Y, Hao J, et al. Hepatoprotective effects of Pleurotus ostreatus protein hydrolysates yielded by pepsin hydrolysis. Catalysts. 2020;10(6). https://doi.org/10.3390/catal10060595

20. Joshi I, Janagaraj K, Noorani KPM, Nazeer RA. Isolation and characterization of angiotensin I-converting enzyme (ACE-I) inhibition and antioxidant peptide from by-catch shrimp (Oratosquilla woodmasoni) waste. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2020;29. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2020.101770

21. Narayanasamy A, Balde A, Raghavender P, Shashanth D, Abraham J, Joshi I, et al. Isolation of marine crab (Charybdis natator) leg muscle peptide and its anti-inflammatory effects on macrophage cells. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2020;25. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2020.101577

22. Villadóniga C, Cantera AMB. New ACE-inhibitory peptides derived from α-lactalbumin produced by hydrolysis with Bromelia antiacantha peptidases. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2019;20. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2019.101258

23. El-Sayed ST, Al-Azzouny RA, Ali OS. Purification and functional characterization of a novel tyrosinase (diphenolase) inhibitory peptides prepared from Solunum tuberosum peels protein via enzymatic hydrolysis. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2019;17:331-338. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2018.12.009

24. Rani S, Pooja K, Pal GK. Exploration of potential angiotensin converting enzyme inhibitory peptides generated from enzymatic hydrolysis of goat milk proteins. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2017;11:83-88. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2017.06.008

25. de Castro RJS, Sato HH. Simultaneous hydrolysis of proteins from different sources to enhance their antibacterial properties through the synergistic action of bioactive peptides. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2016;8:209-212. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2016.09.014

26. Shafiei Kaleybar L, Khoshfetrat AB, Nozad Charoudeh H. Modeling and performance prediction of a conceptual bioprocess for mass production of suspended stem cells. Food and Bioproducts Processing. 2020;122:254-268. https://doi.org/10.1016/j.fbp.2020.04.012

27. Raja K, Martin LC, Bose L, Sahayanathan GJ, Padmanaban D, Chinnasamy A. Anti-proliferative and apoptotic effects of by-product (skin extract) from marine catfish Tachysurus dussumieri. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2020;29. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2020.101816

28. Immunotherapy: a guide for physicians. 2nd ed. In: Khaitov RM, Ataullakhanov RI, Shulʹzhenko AE, editors. Moscow: GEHOTAR-Media; 2018. 767 p. (In Russ.).

29. Xu Q, Hong H, Wu J, Yan X. Bioavailability of bioactive peptides derived from food proteins across the intestinal epithelial membrane: A review. Trends in Food Science and Technology. 2019;86:399-411. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2019.02.050

30. Travnikova NA. Comparative morphology of the bursa fabricii of broiler chickens in the age aspect and different conditions. Cand. sci. vet. diss. abstract. Yekaterinburg: Ural State Agrarian University; 2004. 22 p. (In Russ.).

31. Li D, Xue M, Geng Z, Chen P. The suppressive effects of bursopentine (BP5) on oxidative stress and NF-ĸB activation in lipopolysaccharide-activated murine peritoneal macrophages. Cellular Physiology and Biochemistry. 2012;29:9-20. https://doi.org/10.1159/000337581

32. Li J, Li T-X, Ma Y, Zhang Y, Li D-Y, Xu H-R. Bursopentin (BP5) induces G1 phase cell cycle arrest and endoplasmic reticulum stress/mitochondria-mediated caspase-dependent apoptosis in human colon cancer HCT116 cells. Cancer Cell International. 2019;19(1). https://doi.org/10.1186/s12935-019-0849-3

33. Ahangari H, Yazdani P, Ebrahimi V, Soofiyani SR, Azargun R, Tarhriz V, et al. An Updated review on production of food derived bioactive peptides; focus on the psychrotrophic bacterial proteases. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2021;35. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2021.102051

34. Dullius A, Goettert MI, de Souza CFV. Whey protein hydrolysates as a source of bioactive peptides for functional foods - Biotechnological facilitation of industrial scale-up. Journal of Functional Foods. 2018;42:58-74. https://doi.org/10.1016/j.jff.2017.12.063

35. Martínez-Sánchez SM, Gabaldón-Hernández JA, Montoro-García S. Unravelling the molecular mechanisms associated with the role of food-derived bioactive peptides in promoting cardiovascular health. Journal of Functional Foods. 2020;64. https://doi.org/10.1016/j.jff.2019.103645

36. Khaitov RM. Immunomodulators: myths and reality. Immunologiya. 2020;41(2):101-106. https://doi.org/10.33029/0206-4952-2020-41-2-101-106

37. Liu X-D, Feng X-L, Zhou B, Cao R-B, Li X-F, Ma Z-Y, et al. Isolation, modulatory functions on murine B cell development and antigen-specific immune responses of BP11, a novel peptide from the chicken bursa of Fabricius. Peptides. 2012;35(1):107-113. https://doi.org/10.1016/j.peptides.2012.03.003

38. Yin Y, Qin T, Yu Q, Yang Q. Bursopentin (BP5) from chicken bursa of fabricius attenuates the immune function of dendritic cells. Amino Acids. 2014;46(7):1763-1774. https://doi.org/10.1007/s00726-014-1735-x

39. Feng X-L, Zhou B, Cao R-B, Liu Q-T, Liu K, Liu X-D, et al. Immunomodulatory roles and functional analysis of pre-B lymphocyte DT40 cells with the bursal-derived BSP-II treatment. Peptides. 2012;36(2):292-298. https://doi.org/10.1016/j.peptides.2012.04.015