Omsk, Omsk, Russian Federation
Omsk, Omsk, Russian Federation
Saratov, Saratov, Russian Federation
Stavropol', Stavropol, Russian Federation
Stavropol', Stavropol, Russian Federation
The relevance of research is the experimental and analytical justification of the effectiveness of the joint use of biopolymers of animal and plant origin as a substrate in the process of immobilization of the association of probiotic cultures. Researches are executed in specialized laboratories of universities: Omsk GAU, Saratov GAU, SKFU. In the form of a substrate were used: gelatin, χ-carrageenan, low-esterified pectin, modified starch; as bioobjects are selected: L. acidophilus, B. Lactis, S. thermophilus. To obtain reliable and complete characteristics, a set of research methods was used in the work: physicochemical, sensory, and microbiological. Investigation of immobilization allowed to determine the optimal ratio of biopolymers as a carrier (substrate): pectin and gelatin, as 2:1; the total concentration of solids of the carrier solution (20.0 ± 0.5)% by weight. The total number of viable cells of probiotic microorganisms in membranes (plates) is an average of lg (11.0 ± 0.55). In order to extend the shelf life, the membranes were dried in a freeze dryer, with parameters: the temperature of the frozen product (–25 °C) and the residual pressure in the sublimate 0.013–0.133 kPa. Immobilization by microencapsulation of the association of probiotic cultures of L. acidophilus, B. Lactis and S. thermophilus into a gel of biopolymers: gelatin food, pectin gene LM 106 AS-YA, starch in a ratio of 5:1:1 was studied by microencapsulation. The obtained microcapsules were studied in imitated gastric and intestinal conditions, while the number of viable probiotic cells was determined at different times of their degradation. It was established that 20–25% of viable cells of probiotics were released from capsules in the "artificial stomach" phase, 75–80% in the "artificial bowel" phase. Innovative biotechnologies of milk based products for specialized nutrition are presented.
Immobilization, probiotics, strains of microorganisms, enzymatic hydrolysis in vitro, biotechnology, specialized nutrition
Введение
О значимости проблемы повышения жизнеспо-собности клеток микроорганизмов, используемых в технологии ферментированных продуктов, свидетельствуют исследования, проводимые по сохранности и повышению количества жизнеспо-собных клеток пробиотических культур в процессе технологических операций производства, связанных с механическим и тепловым воздействием, ускоряющие при пассивации отмирания клеток микроорганизмов. Теоретически обосновано и экспериментально изучено влияние отдельных факторов, химических веществ и параметров, активизирующих пробиотические культуры в различных питательных средах, используемых в технологии ферментированных продуктов для специализированного и функционального питания [1, 3].
При отборе пробиотических культур необходимо установить соответствие видовых характеристик путем биохимических и физиологических тестов, которые являются полезными при идентификации бактерий до уровня вида. Так же исследуются живые клетки пробиотических культур с помощью фазового контраста, а клетки, окрашенные по Грамму, –
с помощью светового микроскопа [5]. При составлении ассоциации культур необходимо учитывать их симбиотические отношения и степень устойчивости к неблагоприятным факторам для повышения их функциональных свойств.
В рамках развития пищевой биотехнологии в качестве эффективного метода для защиты бактериальных клеток пробиотических культур рекомендуется использовать иммобилизацию [1]. Вследствие чего этот метод рекомендуется для использования в биотехнологических процессах производства пива и вина [1, 6], а также в специализированных и функциональных продуктах питания.
Иммобилизацию клеток проводят различными способами: связыванием на твердом носителе; включением в структуру носителя с использованием мембранной технологии. Связывание на твердом носителе обычно происходит посредством адсорбции и (или) ковалентного присоединения
(в том числе, с использованием бифункциональных реагентов). Среди методов пространственного фиксирования выделяют микрокапсуляцию и наслаивание с использованием мембранной технологии [8, 12, 15, 18].
Перспективным материалом для носителя (подложки) являются полимерные плёнки, волокна, гели. Нерастворимые материалы, которые служат основой для матриц подобных носителей, могут быть органическими или неорганическими соединениями, синтетическими производными или природными продуктами [1].
Результаты исследований иммобилизации отдельных штаммов пробиотических и сопутствующих культур представлены в научных трудах известных ученых [8, 12, 13, 16, 18, 19, 20].
К методам мембранной технологии также относится микрокапсулирование. Внешняя оболочка микросфер – тонкая, непроницаемая для бактерий, но проницаемая для других компонентов искусственная мембрана. При микрокапсулировании капсулы также защищают продукты иммобилизации и образуют комфортную окружающую среду. Капсулы обладают механической прочностью и пригодны для длительного использования.
Данный метод эффективно используется в производстве витаминно-минеральных премиксов в инкапсулированном виде [9]. Так же он изучен, как метод сохранения биологически активных веществ [9, 10, 11, 14].
Гелевый матрикс для иммобилизации микробных клеток может состоять из агара, агарозы, χ–каррагинана, желатины, коллагена и других ингредиентов.
Цель исследования – изучение совместного использования биополимеров животного и растительного происхождения для повышения жизнеспособности иммобилизованных бактериаль-ных клеток ассоциации пробиотических микроорганизмов.
Объекты и методы исследования
В соответствии с задачами исследования в виде подложки использовались: желатин (ГОСТ 11293-89), χ–каррагинан (ГОСТ 33310-2015), низкоэтери-фицированный пектин (ГОСТ Р 51806-2001), модифицированный крахмал (ГОСТ 32902-2014).
Желатин хорошо растворим, его водный раствор образует студень.
Пектин – это водорастворимое вещество, свободное от целлюлозы и состоящее из частично или полностью метоксилированных остатков полигалактуроновой кислоты, высокомолекулярный полисахарид, является пребиотиком.
Крахмал – растительный полисахарид со сложным строением. Крахмал является важным компонентом пищевых продуктов. Неповреждён-ные крахмальные зёрна плохо растворимы, но он может значительно повысить прочностные характеристики матрицы.
Пищевой каррагинан – это натуральный (природный) гидроколлоид, высокомолекулярное соединение, образующееся из сополимеров солей калия, натрия, магния и кальциевых сернистых эфиров галактозы и 3,6-ангидрогалактозы.
Исследование культур микроорганизмов проводилось на видовом уровне. В качестве биообъектов были выбраны:
– Lactobacilus acidophilus, содержащая штамм La-5;
– Bifidobacterium содержащая штамм Bifidobacte-rium lactis (BB-12);
– Bifidobacterium содержащая штамм Bifidobacte-rium longum (ВВ-46);
– термофильная культура, содержащая опреде-ленный штамм Streptococcus salivarius subsp. thermophilus;
Характеристика биообъектов приведена в табл. 1.
Для получения достоверных и полных характеристик исследуемых объектов применяли современные методы исследования.
Физико-химические методы. Активную кислотность (pH) исследуемых систем определяли с помощью иономера ИПЛ-101 (производство Россия).
Динамическую вязкость определяли на ротационном вискозиметре Fungilab SMART (производство Германия).
Для определения активности воды использовали прибор Pawkit (производство США).
Деградация капсул была исследована в ходе имитации модели переваривания в желудочных и кишечных соках.
Модельный желудочный сок: 2%-ный раствор NaCl в воде Millipore, рН 2 (1 М HCl), пепсин
3600 U / мл, температура 37 °С. Образцы инкубировали в водяной бане при постоянном встряхивании в течение заданного периода времени (120 мин).
Модельный кишечный сок: 0,68 % однооснов-ного фосфата калия; 0,1 % солей желчных кислот; 0,4 % панкреатина, рН 7,5 (0,5 М NaOH), темпе-ратура 37 °С. Образцы инкубировали в водяной бане при постоянном встряхивании в течение заданного периода времени (≈20 мин) [9, 17].
Сушку проводили на сублимационной сушильной установке марки «TG 50» (производство Германия).
Микробиологические методы. Для микро-биологических исследований использовались аттестованные в установленном порядке методики выполнения измерений:
– метод предельных разведений с использованием питательных сред – стерильное обезжиренное молоко и агар с гидролизованным обезжиренным молоком;
– метод предельных разведений с использованием среды Blourock.
Для проведения исследований использовали микробиологический бокс с системой очистки TENCAN (производство Китай).
Изучение морфологии микроорганизмов проводилось методом микроскопирования фиксированных и окрашенных фуксином препаратов на микроскопе «Axioskop 40» (производство Германия) при увеличении 10 х 63.
Результаты и их обсуждение
Мировой и национальный (отечественный) опыт свидетельствует о возросшем интересе населения к здоровому питанию, значительной составляющей которого являются продукты пищевые функциональные. Производство продуктов пищевых функциональных – основной мировой тренд пищевой науки и предмет инновационных исследований. Основным отличием продуктов пищевых функциональных является их направленное физиологическое воздействие на организм человека, источник которого – пробиотические микроорганизмы. При этом важным фактором является их видовое соответствие нормальной микрофлоре желудочно-кишечного тракта (ЖКТ) здорового человека.
Таблица 1 – Характеристика используемых культур
Table 1 – Description of cultures
|
Вид закваски |
Вид микрофлоры |
Минимальная клеточная концентрация, КОЕ/г |
Оптимальная темпе-ратура ферментации, °С |
Активная кислотность, ед. рН |
|
La-5 |
Lactobacilus acidophilus, штамм La-5 |
1 · 109 |
42 ± 2 |
5,5–5,8 |
|
ST-M7 |
Определенный штамм Streptococcus salivarius subsp. thermophilus |
1 · 1010 |
40 ± 5 |
6,0–6,5 |
|
BB-12 |
Тип Bifidobacterium, содержит штамм Bifidobacterium lactis |
1 · 1011 |
37 ± 3 |
6,0 |
Таблица 2 – Характеристика мембран
Table 2 – Membrane characteristics
|
Номер опыта (№) |
Сухие вещества, % |
Вязкость, мПа·с |
Активность воды (aw) |
Активная кислотность, рН |
|
1 |
5,86 ± 0,12 |
8,2 ± 0,1 |
0,870 |
4,37 |
|
2 |
10,41 ± 0,10 |
10,7 ± 0,1 |
0,862 |
4,40 |
|
3 |
13,52 ± 0,15 |
13,1 ± 0,1 |
0,858 |
4,38 |
|
4 |
19,92 ± 0,13 |
18,5 ± 0,1 |
0,853 |
4,40 |
|
5 |
23,14 ± 0,15 |
24,3 ± 0,1 |
0,841 |
4,38 |
Рисунок 1 – Зависимость логарифма числа живых клеток от условий иммобилизации
Figure 1 – Association between the artificial number of live cells and immobilization conditions
В качестве способа защиты жизнеспособных клеток пробиотических микроорганизмов в агрессивных условиях технологического процесса производства и ЖКТ изучен процесс иммобилизации ассоциации пробиотических культур в гидроколлоидные мембраны, которые образуются при использовании метода наслаивания. Значимым объектом исследования является вид носителя (подложки). Следует отметить, что в зависимости от происхождения, химических свойств и биологической активности носителя, возможны следующие результаты иммобилизации методом наслаивания: в случае использования подложкой биополимеров животного или растительного происхождения или их смеси, образуются тонкие пластины (мембраны) с заданными свойствами. Необходимо подчеркнуть, что активность пробиотических культур в мембранах должна быть не менее 1 · 1010 КОЕ/г и хорошо сохраняться в процессе хранения. При растворении мембраны должны иметь период распадаемости (0,5 ÷ 1,0) ч.
Учитывая вышеизложенное, изучено совместное использование биополимеров пектина цитрусового и желатина пищевого. Следует отметить, что данные биополимеры образуют вязкие гели, отличающиеся отличными диффузными свойствами. Активная кислотность процесса гелеобразования соответствует активизации роста пробиотической микрофлоры и составляет рН = 4,0–4,3 ед. Используемые биополимеры так же играют роль пребиотиков, так как содержат глутаминовую кислоту, аргинины, пищевые волокна.
Исследования проводились в специальном боксе в следующей последовательности:
– активизация биомассы клеток пробиотических культур (L. acidophilus : B. lactis : S. thermophilus,
в соотношении 1:1:1) на стерилизованном и охлажденном до температуры (38 ± 1) °С обезжиренном молоке, так как оптимальная температура жизнедеятельности монокультур включенных в ассоциацию, представленных в таблице 1, составляет (38 ± 1) °С;
– подготовка смеси биополимеров проводилась
в соответствии с рекомендациями фирмы-производителя. При этом в опытах изменялась массовая доля биополимеров от 5 % до 25 %
при постоянном соотношении пектина к желатину
как 2:1;
– в реакторе ассоциацию пробиотических культур
в активизированной форме при температуре
(33 ± 1) °С соединяли с гелем биополимеров, перемешивали в течение (15 ± 5) минут;
– затем проводили дозирование полученной смеси в стерильные формы;
– время выдержки форм в условиях специального бокса составляет 15–20 минут. В результате чего, в формах образовались тонкие плёнки (мембраны). Температура хранения мембран (4 ± 2) °С.
Оптимальное количество смеси биополимеров и их соотношения устанавливались путём экспериментов в пятикратной повторности. Результаты обрабатывались с использованием методов математической статистики.
Качество полученных мембран оценивали физико-химическими, сенсорными и микробиоло-гическими методами (таблица 2).
Изучены микробиологические показатели ассоциации культур до иммобилизации (контроль) и после иммобилизации (опыт) (рис. 1).
Анализ данных, представленных на рис. 1, свидетельствует о незначительном снижении степени концентрирования жизнеспособных клеток иммобилизованных культур микроорганизмов в мембранах, что положительно характеризует иммобилизацию как метод защиты клеток в неблагоприятных условиях.
Изучение морфологии микроорганизмов проводилось методом микроскопирования фиксированных и окрашенных фуксином препаратов на микроскопе «Axioskop 40» при увеличении 10 х 63. Результаты исследований представлены на рис. 2 и 3.
Анализ данных, представленных на рисунках, свидетельствует о том, что при включении клеток микроорганизмов в гели, они располагаются равномерно, отсутствуют крупные скопления клеток. Это способствует сохранению высокой активности и стабильности клеток в процессах биосинтеза.
Рисунок 2 – Микроструктура активизированных
культур пробиотических микроорганизмов
(L. acidophilus : B. lactis : S. thermophilus
в соотношении 1:1:1)
Figure 2 – Microstructure of activated probiotic cultures (L.acidophilus, B.lactis and S. thermophilus, ratio1:1:1)
Рисунок 3 – Микроструктура иммобилизованных культур пробиотических микроорганизмов
(L. acidophilus : B. lactis : S. thermophilus
в соотношении 1:1:1)
Figure 3 – Microstructure of immobilized probiotic cultures
(L.acidophilus, B.lactis and S. thermophilus, ratio1:1:1)
Рисунок 4 – Изучение показателей, характеризующих жизнеспособность пробиотических культур
в условиях ЖКТ
Figure 4 – Viability signs of probiotic cultures
in gastrointestinal tract conditions
Кроме показателей, представленных на рисунке, определялась степень устойчивости ассоциации пробиотических культур в иммобилизованной форме (опыт) по отношению к контрольному образцу, а также к щелочной реакции среды (ед. рН). Получены следующие данные: контрольный образец 8,3–9,6; опытный образец 8,3–9,2. Гипотетически предположено, что опытный образец более устойчив
к агрессивным условиям ЖКТ за счет комбинации компонентов – протеинов и полисахаридов, концентрируемых в стенках клеток микроорганизмов, содержащих пектины, которые комплектарны соответствующим рецепторам, расположенным на мембранах эпителиальных клеток. Пектины, в данном случае, являются медиаторами адгезии вследствие своей белковой или гликопротеиновой природы. Тем самым они способствуют увеличению числа жизнеспособных клеток ассоциации пробиотических культур.
Другим аспектом исследований являлось формирование сохранения жизнеспособности в желудке у экспери-ментальной ассоциации пробиотических культур, где количество микробов незначительно из-за его кислой среды, и в кишечнике, в котором для роста микроорганизмов создаются трудности из-за присутствия агрессивных пище-варительных ферментов [7].
Для уточнения качества вышеозначенных свойств были проведены экспериментальные исследования (рис. 4) жизнеспособности пробиотических культур, поступающих в ЖКТ в виде микромембран.
В результате исследований было установлено, что иммобилизованные культуры микроорганизмов проявили устойчивость к исследуемым концентрациям тест-веществ, что может рассматриваться, как косвенный показатель лучшей способности иммобилизованных культур приживаться в желудочно-кишечном тракте человека.
Анализ физико-химических, сенсорных и микробиологических показателей позволяет считать оптимальным количественное соотношение биополимеров в качестве носителя (подложки): пектин и желатин как 2:1; общая концентрация массовой доли сухих веществ раствора носителя (20,0 ± 0,5) %. Микробиологические показатели свидетельствуют о наличии в мембранах (пластинках) жизнеспособных клеток пробиоти-ческих микроорганизмов в среднем lg (11,0 ± 0,55).
С целью продления срока годности и расширения возможности использования мембран (пластинок) изучен способ консервирования их высушиванием.
В качестве метода обезвоживания опытных мембран использовалась сублимационная сушка (лиофилизация), как один из прогрессивных и эффективных методов сушки пищевой промышленности [1]. В данном случае он выбран для снижения процесса термоинактивации ассоциации пробиотических микроорганизмов и сохранения их жизнеспособности после выхода из анабиотического состояния. Процесс высушивания осуществляли при температуре замороженного продукта (–25 °С) и остаточном давлении
в сублиматоре 0,0133–0,133 кПа на производственной установке TG 50 при следующих параметрах, которые представлены на рис. 5.
|
Замораживание tполок = минус 40 °С, τ = 4 ч, tпр. конеч = минус (47 ± 2) °С |
|
Сублимация tполок = 35 °С tисп= минус (54 ± 2) °С, Р = 20 Па, τ = 12 ч |
|
Десорбция tполок = 25 °С, tисп = минус (60 ± 2) °С, Р = 8 Па, τ = 8 ч |
Рисунок 5 – Высушивание опытных образцов мембран
на производственной установке TG 50
Figure 5 – Sublimation of check sample membranes
in dehydrofreezing unit TG 50
Рисунок 6 – Микробиологические показатели
сухих мембран в период хранения
Figure 6 – Microbiological marks of dried membranes
during storage period
После высушивания опытные образцы в условиях специального бокса подвергались тонкому измельчению, просеивались и расфасовывались в стерильные сухие флаконы, герметически упаковывались, этикировались и хранились при температуре (4 ± 2) °С.
В процессе длительного хранения проводились исследования числа клеток пробиотических микроорганизмов в опытных образцах мембран (рис. 6).
Изучение количественного состава микроорганизмов свидетельствует о том, что в течение процесса хранения количество клеток микроорганизмов в мембранах, не подвергнутых сублимационной сушке, уменьшается и при достижении показателя менее 107 КОЕ в 1 г снимаются с хранения. В сухих мембранах количество микроорганизмов остается неизменным на протяжении всего срока годности. Определён гарантированный срок годности свежих мембран – 18 суток, сухих мембран – 90 суток.
Изложенные выше результаты экспери-ментальных исследований и их анализ позволяют считать метод иммобилизации наслаиванием пробиотических культур в гель биополимеров достаточно эффективным.
На следующем этапе изучался процесс иммобилизации микрокапсулированием ассо-циации пробиотических культур L. acidophilus,
B. lactis и сопровождающий S. thermophilus в соотношении 1:1:1 в гель биополимеров: желатин пищевой, гену пектин LM 106 AS-YA, крахмал в соотношении 5:1:1.
Процесс микрокапсулирования проводился в специальном боксе, где была установлена пилотная установка.
В боксе поддерживались асептические условия, манипуляции проводились через специальные отверстия. Суспензию активизированной ассоциа-ции пробиотических культур соединяли в реакторе с раствором биополимеров при температуре (38 ± 1) °С и затем формировали микрокапсулы.
Важным свойством микрокапсул является их доставка в желудочно-кишечный тракт. Эффек-тивность системы доставки пробиотических микроорганизмов иммобилизованных методом микрокапсулирования исследовали в имитирован-ных желудочных (ЖУ) и кишечных условиях (КУ).
При этом определяли следующие показатели: время распада и (или) скорость полного растворения in vitro. Эксперимент проводился в искусственном желудочном соке при температуре (36,5 ± 0,5) °С. Контрольное время, на которое ориентировались при проведении исследований, регламентировано Европейской фармакопеей и составляет 30 мин.
Так как поставлена задача колонизации кишечника жизнеспособными клетками пробиотических микроорганизмов, изучено изменение морфологии микрокапсул в условиях ЖУ (от 30 до 45 мин) и КУ (60 мин).
Для того чтобы оценить, насколько жизнеспособные клетки пробиотиков будут выпущены в желудочно-кишечной среде с различными условия рН, ионной силы и ферментативной активности, определялось количество жизнеспособных клеток пробиотиков при различном времени их деградации.
Выявлено, что 20–25 % жизнеспособных клеток пробиотиков было выпущено из капсул в фазе «искусственный желудок», 75–80 % – в фазе «искусственного кишечника».
Подтверждено, что использование геля биополимеров желатина пищевого, гену пектина
LM 106 AS-YA, крахмала в качестве носителя (подложки) может служить контейнером для инкапсуляции жизнеспособных клеток пробиотиков. Капсулы имели наибольшую концентрацию биологически-активных веществ, что говорит об их лучшей роли в качестве защитного компонента жизнеспособных клеток пробиотиков, а также их контролируемой доставки.
Проведенные исследования показали, что капсулы имели более пористую структуру в условиях «искусственного кишечника», обеспечи-вающую высвобождение жизнеспособных клеток пробиотиков.
Результаты изучения процесса иммобилизации, полученные экспериментальным путем, и их анализ позво-ляют считать, что метод наслаивания, так же как и микрокапсулирования жизнеспособных клеток пробиотиков в гель биополимеров животного и растительного происхождения, является эффективным.
Мониторинг, проводимый Институтом статистических исследований и экономики знаний Высшей школы экономики, показал, что пищевые биотехнологии, как область перспективных исследований, признаны глобальным техноло-гическим трендом, а продукты, содержащие пробиотики, при их регулярном потреблении улучшают и стимулируют пищеварение, усиливают иммунитет при их регулярном употреблении [4].
В процессе разработки биотехнологии новых продуктов на молочной основе с использованием пробиотических культур, иммобилизованных в гели биополимеров, были изучены различные способы их обогащения протеинами в виде изолятов, концентратов, гидролизатов, содержащих высокую концентрацию свободных незаменимых аминокислот с разветвленными боковыми цепочками (ВСАА) и пептиды, участвующие в метаболизме мышечной ткани и построении мышечных волокон. Этот факт важно учитывать при создании продуктов для питания спортсменов.
Среди лиц, регулярно занимающихся любительским и профессиональным спортом, значительное количество молодёжи отдаёт предпочтение тяжелой атлетике. Известно, что она является особо энергозатратной. Технология следующего биопродукта относится к продуктам спортивного питания категории А (белково-углеводные продукты – гейнеры). В качестве источника протеина исследован изолят сывороточных белков – высокоочищенная форма (более 85 % белка), не содержащая жира, холестерина и углеводов (лактозы). Изучен процесс подготовки белково-углеводной основы нового продукта путём частичного гидролиза лактозы ферментным препаратом β-галактозидазы грибкового происхождения Aspergillus niger, в которую вводились компоненты, регулирующие углеводный состав (мёд натуральный и мальтодекстрин) и функциональные свойства («Пантогематоген Северный», витаминно-минеральный премикс «Валетек-7»). Процесс ферментации смеси компонентов проводился закваской DVS культуры LAT PB AC (состав:
B. longum, B. bifidum, B. infantis, S. thermophilus,
L. acidophilus) и ассоциативной закваской культур: L. acidophilus, B. lactis, S. thermophilus в иммобилизованной форме. Разработана биотехно-логия белково-углеводного кисломолочного продукта «Спортивный» для питания спортсменов и нормативная документация для его производства СТО 78805029-035-2015. Продукт (спортивный) может быть реализован в жидком и сухом виде. Новизна технологического решения отражена в Патенте № 2538151 Российской Федерации.
Для питания молодых спортсменов так же разработана технология творожного продукта с использованием методов мембранной фильтрации, направленных на решение различных технологических задач по концентрированию молочных продуктов. Так как требовалось повысить в нормализованной молочной смеси концентрацию протеина, выбран метод ультрафильтрации. Данный процесс проводился на модуле TetraAlcross UC при следующих параметрах: температура (48 ± 2) °С; коэффициент концентрирования 3,2. Полученный концентрат (пермеат) использовался в качестве молочной основы, в которую вводились компоненты, регулирующие углеводный состав, сочетающие быстрые и медленные углеводы, а также специальная добавка – креатин, способствующая наращиванию мышечной массы. Заквашивание и сквашивание смеси компонентов проводилось ассоциацией культур S. thermophilus, L. bulgaricus, Bifidobacterium, L. acidophilus иммобилизованных в гель биополимеров. Творожный продукт вырабатывается без отделения сыворотки. Ему присвоено товароведное название «Биойогуртный творожок».
Технология всех продуктов для питания спортсменов, производимых по инновационным технологиям, апробирована на действующих молочных предприятиях. Исследования показали, что новые продукты отличаются повышенной биологической ценностью белков. Для её определения изучен аминокислотный состав белков продуктов и рассчитан их аминокислотный скор, результаты представлены в табл. 3.
Таблица 3 – Аминокислотный скор белков продуктов для спортивного питания
Table 3 – Amino-acid score of proteins in sport supplement
|
Незаменимые аминокислоты |
Шкала ФАО/ВОЗ |
Биопродукт |
Биородукт «Спортивный» |
Биойогуртный творожок |
||||
|
А |
С |
А |
С |
А |
С |
А |
С |
|
|
Изолейцин |
40,0 |
100 |
66,75 |
166,9 |
63,64 |
159,00 |
51,70 |
129,25 |
|
Лейцин |
70,0 |
100 |
94,01 |
134,3 |
119,48 |
171,00 |
104,00 |
148,57 |
|
Лизин |
55,0 |
100 |
80,25 |
145,9 |
72,73 |
132,00 |
76,70 |
138,18 |
|
Метионин+цистин |
35,0 |
100 |
133,50 |
380,0 |
55,32 |
158,00 |
56,90 |
162,50 |
|
Фенилаланин+тирозин |
60,0 |
100 |
84,06 |
140,1 |
87,92 |
147,00 |
114,00 |
190,00 |
|
Треонин |
40,0 |
100 |
61,00 |
152,5 |
49,87 |
125,00 |
52,10 |
130,25 |
|
Триптофан |
10,0 |
100 |
67,80 |
135,6 |
87,01 |
174,00 |
13,00 |
130,00 |
|
Валин |
50,0 |
100 |
11,06 |
111,6 |
11,17 |
112,00 |
57,10 |
114,00 |
Примечание: А – содержание незаменимых аминокислот, мг в 1 г белка, С – аминокислотный скор, % относительно справочной
шкалы ФАО/ВОЗ
Рисунок 7 – Микробиологические показатели биопродуктов для питания спортсменов
Figure 7 – Microbiological marks of bioproducts for athletes
Отсутствие лимитирующей аминокислоты свидетельствует о биологической полноценности новых продуктов. Повышенное количество метионина в «Биопродукте» для спортивного питания следует объяснить введением в рецептуру гидролизата сывороточных белков, который богат этой незаменимой аминокислотой. Так же изучены микробиологические показатели
новых продуктов, результаты представлены на рисунке 7.
Изучение микробиологических показателей и показателей безопасности позволяет отметить, что все новые продукты для питания спортсменов на завершающем этапе срока годности содержат не менее 1·108 КОЕ/г продукта жизнеспособных клеток пробиотических культур, в том числе не менее 1·107 КОЕ/г продукта бифидобактерий, что позволяет в соответствии с ГОСТ Р 52349-2005 (изм. № 1), считать данные продукты функциональными.
Выводы
На основании результатов аналитико-экспериментальных исследований определены закономерности процесса иммобилизации ассоциаций пробиотических культур, иммобили-зованных в гели различных биополимеров:
– L. acidophilus, B. lactis, S. thermophilus иммобилизованные в гель желатина, пектина и крахмала в соотношении 5:1:1;
– B. longum, B. bifidum, B. infantis, S. thermophilus,
L. acidophilus иммобилизованные в гель пектина и желатина в соотношении 2:1;
– S. thermophilus, L. bulgaricus, Bifidobacterium,
L. acidophilus иммобилизованные в гель желатина, пектина и каррагинана в соотношении 1:1:1.
Экспериментально установлена эффективность их использования в инновационных биотехнологиях продуктов на молочной основе, предназначенных для специализированного питания, в частности питания спортсменов.
1. Gavrilova N.B., Gladilova O.A., and N.L. Chernopolʹskaya. Nauchnye i prakticheskie osnovy biotekhnologii molochnykh i molokosoderzhashchikh produktov s ispolʹzova-niem immobilizatsii kletok mikroorganizmov: monografiya [Scientific and Practical Bases for the Biotechnology of Milk and Dairy Products by Immobilization of Cells: Monograph]. Omsk: Option-Omsk Publ., 2011, 184 p. (In Russ.).
2. Gavrilova N.B., Petrova E.I., and Chernopolskaya N.L. Specialized Product for Sports Nutrition. Food Industry Publ., 2013, no. 10, pp. 84-85. (In Russ.).
3. Ganina, V.I., Sonieva M.M., and Solovyova A.N. Povyshenie zhiznesposobnosti kletok probioticheskikh bakteriy v protsesse sublimatsionnogo vysushivani [Raising the Viability of Probiotic Cells during Sublimation]. Materialy mezhdunarodnoy konferentsii «Biotekhnologiya. Voda i pishchevye produkty» [Conference Proceedings “Biotechnology. Water and Food Products”]. Moscow, 2008, 77 p. (In Russ.).
4. Globalʹnye tekhnologicheskie trendy. Trendler № 15, 2015 [Global Trends in Technology. Trendler № 15, 2015]. Available at: https://issek.hse.ru/trendletter. (accessed 15 June 2017).
5. Holt, J. Bergey's Manual of Systematic Bacteriology in 2 Vol. Moscow: Mir Publ., 1997, 800 p. (In Russ.).
6. Kryakunova E.V. and Kanarsii A.V. Immobilizatsiya mikroorganizmov i fermentov [Immobilization of microorganisms and ferments]. Herald of Kazan Technological University, 2012, vol. 15, no. 17, pp. 189-194. Available at: http://cyberleninka.ru/article/n/immobilizatsiya-mikroorganizmov-i-fermentov. (accessed 15 June 2017).
7. Khavkin A.I. Microflora and the development of the immune system. Current pediatrics, 2012, vol. 11, no. 5, pp. 86 - 89. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.15690/vsp.v11i5.433.
8. Aslim B. and Alp G. The effect of immobilization on some probiotic properties of Streptococcus thermophilus strains. Annals of Microbioljgy, 2009, vol. 59, no. 1, pp. 127-132. https://doi.org/10.1007/BF03175609.
9. Bannikova A., Paramita V.D., and Kasapis S. Preservation of oleic acid entrapped in a condensed matrix of high-methoxy pectin with glucose syrup. Food Hydrocolloids, 2016, vol. 53, pp. 284-292. https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2014.08.011.
10. Beshay U., El-Enshasy H., Ismail I.M.K. et al. β-glucanase productivity improvement via cell immobilization of recombinant Escherichia coli cells in different matrices. Polish Journal of Microbiology, 2011, vol. 60, no. 2, pp. 133-138. Available at: http://www.pjm.microbiology.pl/full/vol6022011.pdf. (accessed 15 June 2017).
11. Burgain J., Gaiani C., Linder M., et al. Encapsulation of probiotic living cells: From laboratory scale to industrial applications. Journal of Food Engineering, 2011, vol. 104, no. 4, pp. 467-483. https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2010.12.031.
12. Cavalheiro C.P., Etchepare M. de A., Silveira M.F., et al. Encapsulation: an alternative for application of probiotic microorganisms in thermally processed foods. Journal of the Center for Natural and Exact Sciences, 2015, vol. 37, pp. 65-74. https://doi.org/10.5902/2179-460X19717.
13. Das A., Ray S., Raychaudhuri U., et al. Microencapsulation of Probiotic Bacteria and its Potential Application in Food Technology. International Journal of Agriculture, Environment and Biotechnology, 2014, vol. 7, no. 1, pp. 47-53. https://doi.org/10.5958/j.2230-732X.7.1.007.
14. Gauri A. and Shiwangi M. Immobilization and microencapsulation. Journal of Advanced Research in Biotechnology, 2017, vol. 2, no. 3, pp. 1-4. http://dx.doi.org/10.15226/2475-4714/2/3/00129.
15. Jalili H., Razavi H., Safari M., et al. Kinetic analysis and effect of culture medium and coating materials during free and immobilized cell cultures of Bifidobacterium animalis subsp. Lactis Bb 12. Electronic Journal of Biotechnology, 2010, vol. 13, no. 3, pp. 1-10. https://doi.org/10.2225/vol13-issue3-fulltext-4.
16. Maryam Y., Fooladi J., and Motlagh M.A.K. Microencapsulation and Fermentation of Lactobacillus acidophilus LA-5 and Bifidobacterium BB-12. Applied Food Biotechnology, 2015, vol. 2, no, 4, pp. 27-32. https://doi.org/10.22037/afb.v2i4.7711.
17. Mendoza-Madrigal A.G., Duran-Paramo E., and Valencia del Toro G. Viability kinetics of free and immobilized bifidobacterium bifidum in presence of food samples under gastroin-testinal in vitro conditions. Revista Mexicana de Ingeniera Quimica, 2017, vol. 16, no. 1, pp. 159-168. Available at: http://www.redalyc.org/pdf/620/62049878016.pdf. (accessed 15 June 2017).
18. Mitropoulou G., Nedovic V., Goya A., et al. Immobilization Technologies in Probiotic Food Production. Journal of Nutrition and Metabolism, 2013, vol. 2013, 15 p. http://dx.doi.org/10.1155/2013/716861.
19. Mozzetti V., Grattepanche F., Moine D., et al. New method for selection of hydrogen peroxide adapted bifidobacteria cells using continuous culture and immobilized cell technology. Microbial Cell Factories, 2010, vol. 9, no. 60. https://doi.org/10.1186/1475-2859-9-60.
20. Ozyurt V.H. and Ötles S. Properties of probiotics and encapsulated probiotics in food. Acta Scientiarum Polonorum, Technologia Alimentaria, 2014, vol. 13, no. 4, pp. 413-424. http://doi.org/10.17306/J.AFS.2014.4.8.
