На сегодняшний день из-за постоянныхвыбросов в атмосферу загрязняющих веществнаблюдается резкое повышение допустимыхконцентраций вредных соединений. Появлениеновых видов болезней и паразитов влияет нато, что производители сельскохозяйственнойпродукции вынуждены применять новые средствазащиты, которые негативно сказываются набезопасности почвы и водоемов. Все это приводитк тому, что с каждым годом появляется все большепрепаратов, где химические соединения заменяютсямикроорганизмами. Однако такие биопрепаратыне всегда оказываются эффективными, поэтомупоиск и выделение новых штаммов с высокойантагонистической активностью является актуальнойзадачей.Использование бактерий с антагонистическойактивностью является в процессе выращиванияи хранения продукции сельского хозяйстваперспективным и актуальным научным направле-нием. С целью предотвращения порчи продукции впроцессе хранения от деятельности нежелательноймикрофлоры сегодня используют химическиепрепараты, облучение, обработка газом илиозоном. Однако данные способы, хоть и являютсяэффективными, имеют свои недостатки [1].Из-за постоянного применения химическихреагентов у патогенов растет устойчивость к ихвоздействию, при этом ежегодно появляются новыевспышки заболеваний. Это приводит к повышениювносимых доз препаратов, что способствуютразвитию устойчивости патогенов.В пищевом производстве безопасные консервантыассоциируются с молочнокислыми бактериями иих метаболитами (бактериоцинами), безопасностькоторых уже не требует доказательства [2, 3].Бактериоцинподобные вещества вырабатываюти другие микроорганизмы. Например, бактериигруппы Bacillus spp., в сочетании с лактобактериями,позволяют расширить спектр антимикробнойактивности с сохранением относительной безопасности. Но и в этом случае не удается достичьполной защиты продуктов от действия патогенныхбактерий [4].В условиях пониженных температур решитьэту проблему с сохранением безопасности могутпсихрофильные микроорганизмы. Это не толькобактерии, но грибы и дрожжи, оказывающиеантагонистический эффект на те микроорганизмы,которые остаются нечувствительными кбактериоцинам молочнокислых бактерий.Психрофильные бактерии – это бактерии, которыеспособны выживать при низких температурах(от –10 °С). Также психрофилы функционируютпри температурах выше 20 °С [5]. На их основеможно создавать новые биопрепараты, подавляющиеразвитие заболеваний у растений даже при невысокихтемпературах [6].Развитие психрофильных микроорганизмовна поверхности пищевых продуктов можетспособствовать их порче даже при низкихтемпературах. Похожая ситуация может возникнутьс патогенными бактериями, некоторые из которыхобладают способностью расти на холоде [7].В природе психрофильные микроорганизмымогут встречаться как в виде прокариот, так иэукариот. К психрофилам относятся некоторыенасекомые, грибы, определенные группы бактерий.В широком смысле, психрофилы – это организмы, непрекращающие свое размножение в условиях низкихтемператур [8, 9].Психрофильные микроорганизмы целе-направленно воздействуют на возбудителейзаболеваний, не наносят экологического вредаи сохраняют все полезные свойства продукции.Помимо предотвращения развития патогенноймикрофлоры, при взаимодействии с продуктоммикроорганизмы активируют защитные процессысамого продукта. За счет этого у него вырабатываетсясобственный иммунитет к фитопатогенам [10].Пещеры на протяжении тысячи лет занимаюттерритории земного ландшафта. Это часть неживойприроды с особенным ландшафтом, в недрах которыхможно найти специфические и встречающиеся толькотам живые организмы. Фауна пещеры подразделяетсяна два вида: троглофилы – организмы, помимопещеры, живущие на наземной части; троглобионты– организмы, обитающие в пещере постоянно.Большое количество представителей троглобионтовобусловлено поддерживанием постоянныхклиматических условий в пещере [11].К сожалению, пещерам, как и другимсоставляющим земного ландшафта, наноситсянепоправимый вред от деятельности человека. Любоестороннее воздействие на пещеры приводит к ееразрушению без возможности восстановления [12].Если рассматривать микробную флору пещеры,то ее представителями можно считать грибыи бактерии, которые находятся на различныхэтапах приспособления к условиям с пониженнойтемпературой. Так как пещера – ограниченноепространство, то это приводит к тому, чтомикроорганизмы находятся в постоянной борьбе заисточники питательной среды. Также микробнымпредставителям пещер необходимо конкурироватьс представителями микрофлоры почвы, которыепоступают в пещеру с верхних слоев и ужеадаптированы к росту при установившихся условияхсреды. Такая борьба привела к тому, что в пещереможно встретить штаммы микроорганизмовс антимикробной активностью, направленнойна подавление роста представителей наземныхбактерий. Данные микроорганизмы можно применятьдля защиты растений от нежелательной микрофлорыи болезней даже при условиях низких температур,где известные биопрепараты не будет приноситьдолжного эффекта [4, 13].После изучения пещерной микробиотыСибирского региона обнаружено наличие в них трехпредставителей микроорганизмов:– облигатно психрофильные микроорганизмы(морские светящиеся бактерии, Bacillus psychrophilus,железобактерии). Для данных представителейоптимальной температурой для роста и развитияявляется диапазон между +15–20 °С. Притемпературе, выходящей за установленные рамки,микроорганизмы теряют способность к дальнейшемуразвитию и погибают. Облигатно психрофильныемикроорганизмы относятся к постоянным обитателямпещер и хорошо адаптированы к сибирскимусловиям;– факультативные микроорганизмы (бактерии родаArthrobacter, Pseudomonas). Представители данногомикробного сообщества имеют оптимальнуютемпературу роста +30 °С. При этом не теряют такуюспособность при температуре +4 °С. Они относятся кмикроорганизмам, которые попадают в пещеры извне.Возможность расти при невысоких температурахпозволяет им полностью адаптироваться к пещернойсреде и образовать свою микробиоту [12, 13];– психротолерантные изоляты, которые вклю-чают в себя температурный диапазон роста,находящийся в промежуточных пределах междуоблигатно психрофильными и мезофильнымимикроорганизмами. Психротолерантные изолятыможно рассматривать как переходную форму междупсихрофилами и мезофилами, которые отличаютсядруг от друга выживаемостью в определенныхтемпературных условиях [4, 14, 15].Главной отличительной особенность изолятовявляется способность запасаться липоидами.Например, известен штамм психрофила DL-3.2,выделенный из ледяной пещеры, может накапливатьдо 60 % жиров. Схожие свойства обнаружены и уизолятов, выделенных из других пещер [5].Психрофильные микроорганизмы отличаютсяот мезофильных высокой скоростью роста припониженных температурах (ниже +10 °С). В своюочередь, факультативные психрофилы размножаютсяболее низкими темпами, чем облигатные. Наиболеезаметны различия в росте психрофильных имезофильных бактерий в диапазоне температур от 0до +10 °С. У мезофилов такие температурные условиязамедляют обмен веществ, что приводит к остановкеделения клетки [16, 17].Известны также экстремальные психрофильныемикроорганизмы. Они растут в специальныхрасщелинах, образующихся между водой и льдом,при температуре –10 °С [18].Было установлено, что почвенные психрофилы,по сравнению с морскими, имеют широкийтемпературый предел, позволяющий им расти вэкстремальных условиях [2, 19].Реакцией на воздействие низких температурявляется выделение белков холодного шока (CSPбелков). Изначально, белки синтезируются внебольшом количестве, но в дальнейшем, существуяв условиях низких температур, их концентрациязначительно увеличивается. CSP белки достаточноактивны и способны уменьшать скорость протеканияреакции. Для психрофилов источником сохраненияэнергии выступают ферменты, которые ускоряютреакционные процессы. При последующемпонижении температуры в клетках бактерийначинают появляться кусочки льда, что приводит к ихгибели. Когда в клетке начинает образовываться лед,то вокруг нее собирается большое количество соли.За счет этого увеличивается осмотическое давлениеклетки и она приспосабливается к осмотическомушоку. Все это приводит к образованию в клеткеосморегуляторных веществ, которые предотвращаютклеточные компоненты от разрушения. Известныбактерии (Pseudomonas syringae) с центромкристаллизации льда, находящимся в мембранныхбелках, контролирующие появление частичекльда. Структура образующегося таким образомльда упорядочена и клетка в меньшей степениподвергается разрушению [5, 16, 19].Психрофилы не образуют единой илинесколько филогенетических групп. Извыделенных и охарактеризованных психротрофныхмикроорганизмов со схожими свойствамибольшинство относятся к бактериям. Бактериитакже достаточно разнообразны: грамотрицательныеи грамположительные бактерии, кокки,спорообразующие бактерии и др. [5, 13].Классификация пещерной микрофлорыСибирского региона достаточно объемна. Грибы,найденные в данной среде, подразделяются на15 родов, которые относятся к 5 отделам: Fusarium,Mortierella, Doratomyces, р.р. Pythium, Cryptococcus,Echinobotryum, Paecilomyces, Mucor, Penicillium,Thamnidium, Trichoderma, Chrysosporium, Periconia,Verticillium.Среди обитающих в пещерах психрофильных ипсихротолерантных бактерий идентифицированыпредставители коринебактерий, а также родArthrobacter, Bacillus, Sporosarcina, Pseudomonas,Paenibacillus, Pseudochrobactrum. Температура,при которой микроорганизмы не теряютспособности размножению, может составлять от +23до +30 °С [9, 16].Исследования микробиоты пещер и регионов скритическими условиями среды ведутся довольнодавно. Уже были достигнуты определенныерезультаты в данной области. Но данные офункциональном состоянии и генетическомразнообразии пока не структурированы и требуютвсестороннего изучения. Психрофилы, хоть иявляются перспективным средством для развитияэкономики и экологии, не являются хорошоизученными. Это говорит о необходимостипроведения новых исследований по данномунаправлению [8, 12].Целью работы является выделение вэкстремальных условиях низких температур пещерГорной Шории и Салаира (Кемеровская область)новых психрофильных микроорганизмов и изучениеих антимикробных свойств.Научная новизна работы заключается в том,что новые психрофильные микроорганизмы быливпервые выделены в экстремальных условиях пещерГорной Шории и Салаира и проведены исследованияпо изучению их антимикробных свойств.Объекты и методы исследованияВ качестве объектов исследования использовалисьпсихрофильные микроорганизмы, выделенные впещерах Горной Шории и Салаира (Кемеровскаяобласть).При выполнении исследований использовалиантибиотики: новограмон, стрептомицин, поли-миксин, карбенициллин, канамицин, неомицин,цепарин, клотримазол, ампициллин, мономицин,левомицитин, тетрациклин, бензилпенициллин игентамицин.Микроорганизмы штаммов: Candida lambica,Streptococcus sp., Enterobacter sp., Micrococcus sp.,Staphilococcus sp., Esherihia sp. и Salmonella sp.При выполнении исследований использовалиследующее оборудование: автоклав «DGM-80»(«DGM», Швейцария), аналитические весы«AND HR-202i» (A&D, Япония), ламинарный бокскласс 2/тип А («ламинарные системы», Россия);бидистиллятор «ТХ 25-11.15.92-81 БС.W39»(ОАО «Химлабприбор», Россия).Пробы отбирали трехкратно, в шахматномпорядке, на определенной глубине. Образцыпомещали в стерильную крафтовую бумагу. Для767Дышлюк Л. С. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2020. Т. 50. № 4 С. 763–773выделения штаммов использовали метод, описанныйв «Методах микробиологического контроля почвы.Методические рекомендации» (утв. Главнымгосударственным санитарным врачом РФ 24.12.2004№ ФЦ/4022), а также Практикумом по биологии почвпод редакцией Г. М. Зеновой.Бактериальные культуры микроорганизмоввыращивали на твердой питательной средеследующего состава в течение 48 часов:– GRM агар, г/л: кислый гидролизат рыбноймуки – 20,0; глюкоза – 10,0; агар – 5,0;– мясопептонный агар (МПА), г/л: пептон сухойТаблица 1. Морфология изолятов, выделенных из пещер Горной Шории и СалаираTable 1. Morphology of isolates from the Gornaya Shoria and Salair cavesИзолят Морфология колоний Микроскопические характеристикиИзолят 1 Колонии диаметром 1–3 мм, цвет колоний светло-желтый со слабо выраженной пигментацией.Колонии круглые, края колоний ровные и плоские,колонии прозрачныеГрамотрицательные палочки 0,5 ± 0,7×1,0 ± 2,5 мкм.При исследовании методом «висячая капля» клеткиподвижныИзолят 2 Мелкоморщинистые, округлые, средних размеров(3–5 мм), профиль волнистый, матовые, цветбелый, край волнистый, структура однородная,консистенция плотнаяДрожжеподобные грибки. Клетки крупные, овальные,размером 3,6–7,2 микрона в длину и 3–4,5 микрона вдиаметре. При исследовании методом «висячая капля»клетки подвижныИзолят 3 Округлые, размер 6–9 мм, профиль выпуклый,ворсинистые, цвет от белого до буро-зеленого, крайнеровный, структура неоднородная, консистенцияплотнаяАктивно развитый мицелий. Споро иконидиеобразующие. ГрамположительныеИзолят 4 Серовато-белые колонии с гладкими краями, слегкаврастающими в агар, вязкой консистенции. Размерколоний 1–3 ммГрамположительные аэробные спорообразующиепалочки размером 2–3×0,6 мкм, расположенныеодиночно, попарно или цепочкой. При исследованииметодом «висячая капля» клетки подвижныИзолят 5 Колонии в центральной части повышенные,бороздчатые, серовато-белые, бледно-розовые,от серовато-зеленых до орехово-зеленыхДрожжеподобные грибки. Мицелий светлый,пушистый. Конидиогенез слабый, серо-зеленоватогооттенкаИзолят 6 Мелкоморщинистые, округлые, больших размеров(3–7 мм), профиль волнистый, матовые, цвет отбелого до кремового, край неровный, структураоднородная, консистенция плотнаяКокки, диплококки, цепочки или скопления из кокков,иногда встречаются палочки. Грамположительные,спорообразующие. Неподвижные. Размер 1–5 мкмИзолят 7 Серовато-белые колонии с гладкими краями, слегкаврастающими в агар, вязкой консистенции. Размер1–3 ммГрамположительные аэробные спорообразующиепалочки размером 2–3×0,6 мкм, расположенныеодиночно, попарно. При исследовании методом«висячая капля» клетки подвижныРисунок 1. Расположение пещеры «Гавриловская»в Кемеровской областиFigure 1. Gavrilovskaya cave in the Kemerovo regionРисунок 2. Расположение пещеры «Азасская»в Кемеровской областиFigure 2. Azasskaya cave in the Kemerovo region768Dyshlyuk L.S. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2020, vol. 50, no. 4, pp. 763–773ферментативный – 10,0; экстракт мясной – 11,0;NaCl – 5,0; агар-агар – 15,0, глюкоза – 10,0; водадистиллированная.Для идентификации выделенных микроорга-низмов использовали бактериальные детерминантыБерги и метод, предложенный в монографииО. А. Нестеренко с соавторами. Мазок окрашивалипо ГрамуИзоляты микроорганизмов получали следующимобразом: для выделения ДНК из анализируемыхобразцов использовался метод экстракции фенолом/хлороформом и очистки раствором CTAB (цетил-триметил аммонийбромид). Морфологический составизолятов представлен в таблице 1.Использовали стандартные методы микро-биологии, Enterotest, Nefermtest, API 50 CH идополнительные каталоги/программы идентификациидля биохимического тестирования, а такжебактериологический полуавтоматический анализатор(«Autoscan», США) для идентификации изолятов.Для оценки супрессивной активности изолятовиспользовали тест-штаммы возбудителей болезнейчеловека, животных и растений. Штаммы родовMicrococcus, Staphilococcus, Streptococcus, Salmonella,Esherihia, Candida и Acinetobacter.Все штаммы-патогены получены из коллекцииФГБУ «Государственный научно-исследовательскийинститут генетики и селекции промышленныхмикроорганизмов Национального исследовательскогоцентра «Курчатовский институт» (ГосНИИГенетика)»и Бактериологической лаборатории при МУЗ ЦРБ Гу-рьевского района.Чтобы идентифицировать активные изолятыпсихротрофных бактерий, изоляты наносили начашки Петри. Параллельно готовили суспензииантагонистических штаммов и патогенныхбактерий плотностью не более 108 КОЕ/мл. ДляРисунок 4. Места отбора проб в пещере «Азасская»Figure 4. Sampling locations in Azasskaya caveТаблица 2. Исследование психрофильных и супрессивных свойств изолятов, полученныхиз пещер Горной Шории и СалаираTable 2. Psychrophilic and suppressive properties of isolates obtained from the caves of Gornaya Shoria and SalairНомеризолятаВид микроорганизмаCandidalambicaStreptococcussp.Enterobactersp.Micrococcussp.Staphilococcussp.Esherihiasp.Salmonellasp.1 2 3 4 5 6 7Изолят 1 +++ ++ + + ++++ + ++Изолят 2 – + + – – – –Изолят 3 – + – – – ++ –Изолят 4 +++ + ++++ ++ + ++ +Изолят 5 – – ++ ++ ++ + –Изолят 6 – + + – – – –Изолят 7 – + + – – + –«–» – отсутствие зон; + наличие зоны угнетения роста патогена в месте соприкосновения с бактериальным штрихом; ++ обширная зонаугнетения роста патогена в месте соприкосновения с бактериальным штрихом и в сопредельной области; +++ наличие зоны лизиса междуштаммами; ++++ наличие обширной зоны лизиса между штаммами.“–” – no zones; + a zone of inhibition where pathogen comes in touch with the bacterial streak; ++ an extensive zone of inhibition where pathogencomes in touch with the bacterial streak and in the adjacent area; +++ a lysis zone between strains; ++++ an extensive lysis zone between strains.Рисунок 3. Места отбора проб в пещере «Гавриловская»Figure 3. Sampling locations in Gavrilovskaya cave769Дышлюк Л. С. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2020. Т. 50. № 4 С. 763–773получения желаемых клеток бактериальный газонпромывали 0,9 % раствором NaCl. Суспензиюфитопатогенных грибов готовили промываниеммицелия и массы спор с грибных газонов накартофельном агаре с декстрозой (КНА). В чашкуПетри с GRM, мясопептонным агаром (MPA) и КНАинокулировали штаммы-антагонисты по диаметрулинии. Инокулировали суспензию бактериальной игрибковой культур перпендикулярно линии. ЧашкиПетри хранили в холодильнике при 4 °C. Наличие зонподавления роста патогенов оценивали через 8 дней.Устойчивость к антибиотикам определяласьобластью, в которой диск с антибиотиком подавлялрост изолята. Для этого выделенную суспензиюклеток инокулировали сплошным газоном вчашке Петри со средой на основе агара, а диски сантибиотиками помещали на поверхность среды.Инкубировали в термостате при 28 °C в течение 24 ч.Описывали рост изолятов.Рисунок 5. Колонии изолятов на ГРМ-агаре через 24 чкультивированияFigure 5. Colonies of isolates on agar after 24 hof cultivation(а) (b)(c) (d)Таблица 3. Результаты изученияантибиотикоустойчивости изолята 1Table 3. Isolate 1: antibiotic resistanceАнтибиотик Содержание микроорганизмовв 1 см3 культуры штамма1×106 1×107 1×108Зоны ингибирования ростаизолятов, ммАмпициллин 0 0 0Стрептомицин 12 14 17Гентамицин 0 0 0Карбенициллин 19 21 20Полимиксин 0 0 0Левомицитин 21 21 19Клотримазол 6 8 6Цепарин 20 19 17Тетрациклин 0 0 0Мономицин 3 2 2Неомицин 26 26 24Новограмон 25 23 26Канамицин 22 19 17Бензилпенициллин 2 3 2Рисунок 6. Ингибирование зон роста изолята 1:1 – цепарин; 2 – ампициллин; 3 – полимиксин;4 – гентамицин; 5 – канамицин; 6 – тетрациклин;7 – неомицин; 8 – левомицитин; 9 – карбенициллин;10 – стрептомицин; 11 – клотримазол;12 – бензилпенициллин;13 – мономицин; 14 – новограмонFigure 6. Inhibition of growth zones of isolate 1:1 – Ceparin;2 – Ampicillin; 3 – Polymyxin; 4 – Gentamicin; 5 – Kanamycin;6 – Tetracycline; 7 – Neomycin; 8 – Levomycetin; 9 – Carbenicillin;10 – Streptomycin; 11 – Clotrimazole; 12 – Benzylpenicillin;13 – Monomycin; 14 – NovogramРисунок 7. Ингибирование зон роста изолята 4:1 – полимиксин; 2 – ампициллин; 3 – тетрациклин;4 – гентамицин; 5 – клотримазол; 6 – карбенициллин;7 – новограмон; 8 – мономицин; 9 – стрептомицин;10 – бензилпенициллин; 11 – неомицин;12 – цепарин; 13 – канамицин; 14 – левомицитинFigure 7. Inhibition of growth zones of isolate 4: 1 – Polymyxin;2 – Ampicillin; 3 – Tetracycline; 4 – Gentamicin; 5 – Clotrimazole;6 – Carbenicillin; 7 – Novogram; 8 – Monomycin; 9 – Streptomycin;10 – Benzylpenicillin; 11 – Neomycin; 12 – Zeparin;13 – Kanamycin; 14 – Levomycetin770Dyshlyuk L.S. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2020, vol. 50, no. 4, pp. 763–773Таблица 4. Результаты изученияантибиотикоустойчивости изолята 4Table 4. Isolate 4: antibiotic resistanceАнтибиотик Содержание микроорганизмовв 1 см3 культуры штамма1×106 1×107 1×108Зоны ингибирования ростаизолятов, ммНовограмон 22 27 25Стрептомицин 1 1 2Полимиксин 0 0 0Карбенициллин 0 0 0Канамицин 13 17 16Неомицин 13 12 11Цепарин 18 20 22Клотримазол 10 11 12Ампициллин 1 2 6Мономицин 11 12 10Левомицитин 20 18 18Тетрациклин 13 13 14Бензилпенициллин 8 6 8Гентамицин 1 1 2Таблица 5. Результаты изученияантибиотикоустойчивости изолята 5Table 5. Isolate 5: antibiotic resistanceАнтибиотик Содержание бактерийв 1 см3 культуры штамма1×106 1×107 1×108Зоны ингибирования роста, ммКанамицин 0 0 0Бензилпенициллин 26 23 27Цепарин 24 22 27Полимиксин 12 17 15Тетрациклин 0 0 0Стрептомицин 21 20 22Клотримазол 21 21 22Левомицитин 27 22 22Гентамицин 14 17 12Ампициллин 0 0 0Неомицин 13 17 16Мономицин 12 17 12Карбенициллин 22 20 22Новограмон 23 26 27Рисунок 8. Ингибирование зон роста изолята 5:1 – цепарин; 2 – гентамицин; 3 – полимиксин;4 – карбенициллин; 5 – мономицин; 6 – новограмон;7 – бензилпенициллин; 8 – клотримазол; 9 – тетрациклин;10 – стрептомицин; 11 – канамицин; 12 – неомицин;13 – ампициллин; 14 – левомицитинFigure 8. Inhibition of growth zones of isolate 5: 1 – Ceparin;2 – Gentamicin; 3 – Polymyxin; 4 – Carbenicillin; 5 – Monomycin;6 – Novogram; 7 – Benzylpenicillin; 8 – Clotrimazole;9 – Tetracycline; 10 - Streptomycin; 11 – Kanamycin;12 – Neomycin; 13 – Ampicillin; 14 – LevomycetinРезультаты и их обсуждениеВ результате проведенных исследованийиз микробных сообществ пещер Гавриловская(Кемеровская область, Беловский район, рис. 1, 3)и Азасская (Кемеровская область, Таштагольскийрайон, п. Усть-Кабырза, рис. 2 и 4) выделено 7изолятов, различных по морфологическим признакам.Для выделенных изолятов исследовалисупрессивные и психрофильные свойства.Полученные результаты представлены в таблице 2.На основании анализа данных, представленныхв таблице 1, установлено, что изоляты 1, 4 и 5обладают выраженными супрессивными свойствамипо отношению ко всем изученным тест-культурампатогенов при температуре 2 ± 4 °С. Дальнейшиеисследования свойств изолятов целесообразнопроводить с номерами 1, 4 и 5 (рис. 5).Результаты изучения антибиотикорезистентностивыделенных изолятов представлены в таблицах 3–5 ина рисунках 6–8.Полученные результаты свидетельствуют отом, что изолят 1 проявляет высокую устойчивость(21–26) к антибиотикам неомицину и новограмону.Среднюю устойчивость (17–22) – к цепарину,канамицину, левомицитину, карбенициллину истрептомицину. Низкую устойчивость (2–8) – кбензилпенициллину и клотримазолу. Изолят 1 непроявляет антибиотикоустойчивость к ампициллину,гентамицину и тетрациклину.Изолят 4 проявляет высокую устойчивость(22–27) к новограмону. Среднюю устойчивость(10–22) к антибиотикам тетрациклину, клотримазолу,неомицину, цепарину, канамицину, левомицитинуи мономицину. Низкую устойчивость (2–8) кантибиотикам ампициллину, бензилпенициллину,стрептомицину и гентамицину. Изолят 4 не проявляетантибиотикоустойчивость к карбенициллину иполимиксину.Изолят 5 высоко устойчив (27–26) кантибиотикам цепарину, бензилпенициллину,левомицитину и новограмону. Средне устойчив(12–22) к клотримазолу, стрептомицину, неомицину,гентамицину, полимиксину, карбенициллину имономицину. Изолят 5 не устойчив к ампициллину,тетрациклину и канамицину.771Дышлюк Л. С. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2020. Т. 50. № 4 С. 763–773ВыводыИз микробных сообществ пещер Гавриловская(Кемеровская область, Беловский район) и Азасская(Кемеровская область, Таштагольский район,п. Усть-Кабырза) выделено 7 изолятов, различныхпо морфологическим признакам. Установлено, чтонаиболее выраженными супрессивными свойствамипо отношению к тест-культурам патогенов(Candida lambica, Streptococcus sp., Enterobactersp., Micrococcus sp., Staphilococcus sp., Esherihiasp., Salmonella sp.) обладают изоляты 1, 4 и 5.Установлены пределы антибиотикоустойчивостиизолятов психрофильных микроорганизмов.Критерии авторстваФактический вклад каждого автора:Л. С. Дышлюк – 25 %, О. О. Бабич – 25 %,Л. А. Остроумов – 15 %, Сяоцзе Ван – 5 %,С. Ю. Носкова – 5 %, С. А. Сухих – 25 %.Конфликт интересовАвторы заявляют об отсутствии конфликтаинтересовContributionEach of the authors is responsible for the followingpart of research: L.S. Dyshlyuk – 25%, O.O. Babich– 25%, L.А. Ostroumov – 15%, Xiaojie Wang – 5%,S.Yu. Noskova – 5%, S.A. Sukhikh – 25%.Conflict of interestThe authors declare that there is no conflict ofinterests regarding the publication of this article.