ВведениеЖимолость – одна из наиболее многочисленныхпо видовому составу кустарниковых пород. Онашироко представлена в горных и равнинных лесахумеренной зоны Евразии и Северной Америки.Теневыносливость и неприхотливость к условиямпроизрастания дают возможность использоватьжимолость в защитных и защитно-рекреационныхлесных насаждениях. Кроме того, разнообразиедекоративных достоинств жимолости привлекаетвнимание специалистов по озеленению. Насегодняшний день в России (в особенности вевропейской части) и за рубежом (Канада, страныСНГ и др.) как среди ученых различных направлений,так и среди предпринимателей агропромышленногои лесопромышленного комплексов увеличился спросна ягодную продукцию и сортовой посадочныйматериал жимолости съедобной. К настоящемувремени в России создано более 100 сортов жимолостисъедобной, различающихся по урожайности,формам, размерам и вкусовым качествам плодов. Натерритории Российской Федерации (Новосибирская,Томская, Нижегородская, Воронежская и Костромскаяобласти, республика Татарстан и др.), Белоруссии иУкраины созданы крупные промышленные плантациижимолости, где выращивают перспективныеотечественные сорта. Они отличаютя от ранеесозданных сортов большей крупноплодностью,однородностью периода созревания, устойчивостью кпреждевременному осыпанию с куста и пригодностьюкустов для механизированной уборки урожая [1–3].Жимолость съедобная (Lonicera edulis Turcz. exFreyn) – небольшой куст высотой от 0,5 до 1,2 м стонкими, бурым, часто поникающими скелетнымиветвями, тонкими и негустоопушенными побегами,узкими, продолговато-эллиптические или ланцетными1 N.V. Vereshchagin Vologda State Dairy Farming Academy , Vologda, Russia2 All-Russian Research Institute for Silviculture and Mechanizati on of Forestry , Pushkino, Russia3 Kostroma State Agricultural Academy , Karavaevo, RussiaReceived: August 17, 2021 Accepted in revised form: Sept ember 10, 2021Accepted for publication: X X, 2021*е-mail: makarov_serg44@mail.ru© E.I. Kulikova, S.S. Makarov, I.B. Kuznetsova, A.I. Chudetsky, 2021Abstract.Introduction. The demand for honeysuckle berries and planting material is growing. Clonal micropropagation is the mosteffective method for industrial plantations. The research objective was to study the effect of cytokinins and auxins on Russianand Canadian honeysuckle microshoots and roots.Study objects and methods. The study featured regenerated honeysuckle (Lonicera edulis Turcz.) of three Russian cultivars(Bakcharsky Velikan, Doch Velikana, Yugana) and two Canadian cultivars (Boreal Beauty, Boreal Beast). The experimentfocused on the effect of sterilizing agents and sterilization time on the viability of honeysuckle explants at the stage of cultureintroduction in vitro. The effect of the growth regulator Cytodef in the QL nutrient medium on organogenesis was studiedat the stage of micropropagation proper, the effect of auxin IBA on plant root formation – at the stage of rooting in vitro.Results and discussion. The greatest viability of honeysuckle explants (80–94%) was registered in the samples affected byLizoformin 3000 (5%) and silver nitrate (0.2%) as sterilizing agents with a sterilization time of 10 min at the stage of invitro culture introduction. The biggest quantity (8.8 pcs.) and total length (40.1 cm) of microshoots were observed whenthe content of cytokinin Cytodef in the culture medium QL was 0.3 mg/L at the stage micropropagation proper. The BorealBeast cultivar had the largest total length of shoots (29.0 cm). The biggest quantity (5.5 pcs.) and total length (30.8 cm) ofroots resulted from 0.5 mg/L of auxin IBA at the stage of rooting in vitro. Coconut substrate produced the highest survivalrate (92–99%) at the stage of adaptation to non-sterile conditions in vivo, with the greatest number of leaves (8.1–10.2 pcs.)observed in Canadian cultivars.Conclusion. Cytodef and IBA proved to be effective growth-regulating substances for microplants of Russian and Canadianhoneysuckle cultivars in vitro, which makes them promising for berry plantations.Keywords. Clonal micropropagation, in vitro, Lonicera, cultivar, growth regulators, rootingFunding. The research was part of the State Task “Applied Scientific Research” of the Federal Forestry Agency of the RussianFederation (Order of the Federal Forestry Agency dated December 25, 2018, No. 1061).For citation: Kulikova EI, Makarov SS, Kuznetsova IB, Chudetsky AI. Russian and Foreign Cultivars of Honeysuckle(Lonicera edulis Turcz.): cultivation studies in vitro. Food Processing: Techniques and Technology. 2021;51(2):712–722.https://doi.org/10.21603/2074-9414-2021-2-712-722.714Kulikova E.I. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2021, vol. 51, no. 4, pp. 712–722листьями. Цветки жимолости съедобной бледно-желтые, с пыльниками, далеко выставляющимисяиз венчика. Жимолость съедобная является однойиз наиболее перспективных для выращивания иэкологически пластичных ягодных культур, имеетранние сроки созревания (июнь), обладает высокойзимостойкостью (до –50 °C) и скороспелостью.Плоды удлиненные, разнообразной формы, обладаютисключительной пищевой и лекарственной ценностью.В ягодах жимолости съедобной содержитсябольшое количество сухих веществ (до 16,4 %),органических кислот (до 5,3 %), сахаров (до 12,5 %),пектинов (до 1,6 %), дубильных и красящихвеществ (до 0,3 %), микро- и макроэлементов,витаминов A, С, B1, B2 и P-активных соединений(до 1856 мг%), представленных катехинами,антоцианами, лейкоантоцианами, иридоидами,флавонолами, хлоргеновыми кислотами и рядомдругих биологически активных веществ. Плодыжимолости имеют уникальные вкусовые свойства(обычно кисло-сладкие и сладкие, часто с горчинкой).Их употребляют в свежем, замороженном исушеном видах, а также успешно используют дляизготовления соков, компотов, морсов, варенья,джемов, конфитюров, хлебобулочных изделийи множества видов пищевой продукции. Ягодыобладают гипотензивными, антиоксидантными ипротивовоспалительными свойствами, являютсяотличным средством против анемии, авитаминоза,упадка сил, снижения иммунитета, могутиспользоваться в медицине при профилактике илечении простудных и аллергических заболеваний,головных болей, заболеваний желудочно-кишечноготракта, гипертонии и цинги [1–13].Жимолость обладает некоторой теневыно-сливостью, произрастает в подлеске хвойных исмешанных лесов, но лучше растет и плодоноситв условиях хорошей освещенности (на лугах,опушках и т. п.). При этом хорошо растет тольков условиях достаточного увлажнения и приповышенной влажности воздуха, но отрицательнореагирует на длительное затопление корневойсистемы грунтовыми водами. Это затрудняетвозможность ее культивирования на тяжелыхглинах и неосушенных торфяниках. Помимоэтого, жимолость – самобесплодная культура. Всвязи с этим при ее выращивании специалистырекомендуют сажать несколько сортов наодном квартале, но не менее трех. Размножениежимолости съедобной возможно вегетативнымиспособами: горизонтальными отводками, зеленымии одревесневшими черенками, делением куста. Приэтом сохраняются ее сортовые признаки. Зеленоечеренкование – наиболее результативный способразмножения этой культуры, при котором на 2-й годпосле посадки стандартного саженца на постоянноеместо с него можно срезать, в зависимости от сорта, от5 до 20 зеленых черенков, на 3-й год – до 50–140 шт.Такой способ является затратным, поскольку длячеренкования требуется наличие сооруженийзащищенного грунта (теплиц, парников, рассадникови укрывных рядов) и туманообразующих установокдля создания необходимой влажности воздуха. Такженеобходимо поддержание определенных условийпроизрастания: слой субстрата из торфа и пескане менее 20 см со слоем промытого речного пескатолщиной 5 см; оптимальная температура воздухав пределах от +25 до +30 °C; оптимальный срокзаготовки черенков, совпадающий с окончаниемроста побегов, – 3-я декада июня. Размножениеодревесневшими черенками в практике выращиванияпосадочного материала жимолости встречаетсясравнительно редко, т. к. приживаемость жимолостипри этом низкая (15–20 %). Размножение отводкамиприменяется у молодых растений жимолости, ветвикоторых расположены близко к земле, обычно вконце апреля – начале мая. При этом однолетниеветви жимолости осторожно пригибают к земле,стараясь не сломать побеги; отводки окучиваютвлажной землей или перегноем. Горизонтальныеотводки отделяют от материнского растения веснойи сажают на доращивание на 1–2 года или оставляютвозле материнского растения до осени второго года.Однако при таком способе размножения от одного3–4-летнего растения жимолости можно за сезонполучить не более 3–6 отводков. Иногда практикуютразмножение молодых (3–4-летних) растенийжимолости делением куста (в конце сентября),при котором от 5-летних растений можно получитьдо 5–12 дочерних растений, а от растений старше8–10 лет – еще меньше [1–3, 14, 15].При создании промышленных плантаций наиболееперспективным и эффективным методом размноженияявляется клональное микроразмножение. Этосовременный метод вегетативного размножения,который имеет ряд преимуществ:– возможность получения в короткие срокиоднородного оздоровленного посадочного материалаот пораженных вирусными, бактериальными игрибными болезнями растений;– получение в большом количестве вегетативногопотомства трудноразмножаемых в обычных условияхвидов растений;– возможность круглогодичного проведения работыв лабораторных условиях;– возможность депонирования пробирочных растенийв течение длительного времени при пониженныхплюсовых температурах для создания «банка» ценныхформ растений [16].В последние годы клональным микроразмножениемжимолости активно занимается ряд исследователейиз России и стран СНГ. Для микроразмножения впромышленных масштабах используется методиндукции развития пазушных меристем. Он основан на715Куликова Е. И. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2021. Т. 51. № 4 С. 712–722активации пазушных меристем и снятии апикальногодоминирования путем удаления главного побега имикрочеренкования в пробирке либо введением впитательную среду различных росторегулирующихвеществ цитокининовой группы для стимулированияразвития пазушных побегов. В настоящее времяпролиферация пазушных меристем считается болеенадежной в отношении плодово-ягодных растений,поскольку обладает минимальной степенью рискаполучения неоднородного потомства и появлениямутированных растений [17–20]. Однако культуреin vitro высших растений до сих пор не уделяетсядолжного внимания [21].С 2015 г. исследования по микроклонированиюновых сортов жимолости с применением современныхросторегулирующих веществ и биопрепаратов ведутсяна Центрально-европейской лесной опытной станцииВНИИЛМ. На основании проведенных исследованийустановлено, что размноженные в условияхin vitro растения на протяжении трех вегетацийобладают большей продуктивностью, чем растения,полученные при укоренении зеленых и одревесневшихчеренков [22–24].Цель исследования – изучить влияниерегуляторов роста цитокининов и ауксинов напроцессы органогенеза и ризогенеза растенийжимолости съедобной новых перспективных сортовроссийской и канадской селекции при клональноммикроразмножении.Объекты и методы исследованияИсследования по выращиванию растенийжимолости съедобной в культуре in vitro проводилив лабораториях клонального микроразмножениярастений на базе филиала Всероссийского научно-исследовательского института лесоводства имеханизации лесного хозяйства «Центрально-европейская лесная опытная станция» и Вологодскойгосударственной молочнохозяйственной академииим Н. В. Верещагина в 2016–2021 гг.В качестве объектов исследований использовалисьрастения жимолости съедобной новых перспективныхсортов российской (Бакчарский великан, Дочьвеликана, Югана) и канадской (Boreal Beauty,Boreal Beast) селекции, имеющих преимущества покрупноплодности и однородности сроков созреванияпо сравнению с ранее созданными сортами.Процесс клонального микроразмножения растенийсостоит из 4 основных этапов:1) введение в культуру in vitro (выбор растения-донора, изолирование эксплантов и получение хорошорастущей стерильной культуры);2) собственно микроразмножение (пролиферация),когда достигается получение макcимальногоколичеcтва мериcтематичеcких клонов;3) укоренение (ризогенез) размноженных побеговin vitro;4) адаптация укорененных растений к нестерильным(почвенным) условиям, а при необходимоcти –депонирование раcтений-регенерантов припониженной температуре (от +2 до +10 °C) споследующим выращиванием растений в условияхтеплицы и подготовкой их к реализации или посадкев полевых условиях [16].На этапе введения в культуру in vitro в качествеэксплантов использовали этиолированные побеги иапикальные меристемы растений (рис. 1). Заложилидвухфакторный опыт, в котором первый фактор – типстерилизующего агента, второй – время стерилизации(5, 10, 15 мин). Выбор стерилизующего веществазависит от чувствительности и типа экспланта.Добиться снижения зараженности эксплантов можноспециальными приемами: использование эксплантов свыращиваемых в теплице растений или подвергнутыхтермотерапии; предварительная стерилизация принебольших концентрациях с последующей посадкойна питательную среду; введение в питательнуюсреду веществ, которые провоцируют быстроепроявление инфекции. В качестве стерилизующихагентов применяли 0,1 %-ный раствор сулемы,0,2 %-ный раствор нитрата серебра и 5 %-ный растворпрепарата Лизоформин 3000. Повторность опытатрехкратная.На этапе пролиферации определяющую рольиграют видовые и сортовые особенности экспланта,его строение, происхождение, ориентация напитательной среде, ее состав и физические условиякультивирования. На культивирование эксплантов вкультуре in vitro значительное влияние оказываютусловия освещенности и температура. Растениякультивировали в условиях световой комнаты вРисунок 1. Этап стерилизацииэксплантов жимолости съедобнойFigure 1. Sterilization of honeysuckle explants716Kulikova E.I. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2021, vol. 51, no. 4, pp. 712–722течение 30–45 суток при поддержании освещениялюминесцентными лампами 2500–3000 лк,фотопериоде 16 ч света и 8 ч темноты, температуревоздуха +25 °C, относительной влажностивоздуха 80 % (рис. 2, 3). На этапе «собственномикроразмножение» заложили двухфакторныеопыты по изучению влияния добавления впитательную среду QL (Кворина-Лепуавра)регулятора роста цитокининовой группы Цитодеф(синтетический производный природного цитокининадифенилмочевины, по активности не уступающий6-БАП или кинетину). На этапе укоренения in vitroзаложили двухфакторные опыты по изучениювлияния ауксина ИМК (индолил-3-масляная кислота)в питательной среде на рост и развитие растенийжимолости съедобной. Первый фактор – сорт, втрой– концентрация росторегулирующего вещества (0,1,0,3 и 0,5 мг/л). Учитывали количество, среднююи суммарную длину микропобегов и корней.Повторность трехкратная, в каждом варианте – 10пробирочных растений.Далее укорененные растения жимолости съедобнойадаптировали к нестерильным условиям in vivo. Дляэтого их пересаживали в кассеты, наполненныеразличными субстратами, в качестве которыхиспользовались торф верхового типа, торф с песком всоотношении 1:3 и кокосовый субстрат. Определялиприживаемость растений, количество листьев исуммарный прирост побегов.Статистическую обработку данных осуществлялис использованием параметрических критериевСтьюдента и Дункана при помощи программногообеспечения AGROS v.2.11 и стандартных пакетовMicrosoft Office 2016. Оценку достоверности различиймежду средними данными вариантов опыта проводилис помощью наименьшей существенной разности для5 %-го уровня значимости (НСР05).Результаты и их обсуждениеПо результатам проведенных экспериментальныхисследований отмечено, что тип стерилизующегоагента и время стерилизации оказывали влияниена жизнеспособность эксплантов жимолостисъедобной различных сортов на этапе введенияв культуру in vitro. Наилучший стерилизующийэффект наблюдался при использовании в качествестерилизующих агентов Лизоформина 3000 и AgNO3,где максимальная жизнеспособность составила(время стерилизации 10 мин): для сортов канадскойселекции – 80 и 94 %, для российских сортов – 90 и92 % соответственно. Наихудшие показатели былиотмечены при использовании ртуть содержащегораствора сулемы при времени стерилизации 5 и15 мин.Биометрические показатели жимолости съедобнойразличались в зависимости от концентрацииросторегулирующих веществ. На этапе «собственноРисунок 2. Этап образования микропобегов жимолостисъедобной in vitro на питательной среде QLFigure 2. Microshoot development in vitro on QL nutrient mediumРисунок 3. Этап корнеобразования микрорастенийжимолости съедобной in vitroFigure 3. Root development in vitro in honeysuckle microplants717Куликова Е. И. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2021. Т. 51. № 4 С. 712–722микроразмножение» наибольшее количество побеговформировалось при добавлении в питательную средуцитокинина Цитодеф в концентрации 0,5 мг/л идостигало в среднем 8,8 шт. на одно растение. Этов 1,1 и 2,7 раза больше, чем при концентрациях 0,3и 0,1 мг/л соответственно. Существенных различийпо сортам не выявлено (табл. 2).Средняя длина побегов жимолости быланаибольшей при концентрации цитокинина Цитодеф0,3 мг/л и составляла 5,2 см. Это в 1,7 и 3,3 разаТаблица 1. Жизнеспособность эксплантов жимолости съедобной различных сортовв зависимости от стерилизующего агента и времени стерилизации, %Table 1. Viability of explants of various honeysuckle cultivars depending on the sterilizing agent and sterilization time, %Сорт Время стерилизации,минСтерилизующий агентСулема 0,1 % Лизоформин 3000 5 % AgNO3 0,2 %Бокчарский великан 5 40 52 4210 62 90 9215 36 66 60Дочь великана 5 40 52 3610 74 78 8815 40 50 72Югана 5 36 50 4010 68 74 8615 42 40 62Boreal Beauty 5 36 48 4010 70 72 8215 28 42 64Boreal Beast 5 30 42 4210 72 80 9415 30 40 60Таблица 2. Количество побегов жимолости съедобнойв зависимости от сорта и концентрации цитокинина Цитодеф, шт.Table 2. Amount of honeysuckle shoots depending on the variety and concentration of cytokinin Cytodef, pcs.Сорт Концентрация Цитодеф, мг/л Среднее0,1 0,3 0,5Бокчарский великан 3,3 7,4 8,3 6,3Дочь великана 3,1 6,9 7,8 5,9Югана 2,9 8,3 9,1 6,9Boreal Beauty 3,4 7,9 9,9 7,1Boreal Beast 3,6 8,2 8,9 6,9Среднее 3,3 7,7 8,8 –НСР05 фактор А = 2,01, фактор В = 1,76, общ. = 1,31Таблица 3. Средняя длина побегов жимолости съедобной в зависимости от сортаи концентрации цитокинина Цитодеф, смTable 3. Average length of honeysuckle shoots depending on the variety and concentration of cytokinin Cytodef, cmСорт Концентрация Цитодеф, мг/л Среднее0,1 0,3 0,5Бокчарский великан 1,1 4,5 3,3 3,0Дочь великана 1,8 5,5 3,0 3,4Югана 1,8 5,0 2,8 3,2Boreal Beauty 1,9 4,8 2,9 3,2Boreal Beast 1,5 6,0 3,5 3,6Среднее 1,6 5,2 3,1 –НСР05 фактор А = 1,89 фактор В = 1,50 общ. = 1,09718Kulikova E.I. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2021, vol. 51, no. 4, pp. 712–722больше, чем при концентрациях 0,5 и 0,1 мг/лсоответственно. Различий в зависимости от сортатакже не выявлено (табл. 3).Суммарная длина побегов жимолости приконцентрации в питательной среде цитокининаЦитодеф 0,3 мг/л достигала 40,1 см. Это в 1,5 разабольше, чем при концентрации 0,5 мг/л, и в 7,6 разабольше, чем при концентрации 0,1 мг/л. У сортажимолости Boreal Beast наблюдалась наибольшаясуммарная длина побегов 29,0 см, а у сортаБокчарский великан наименьшая – 21,6 см. Междудругими исследуемыми сортами различия былинесущественны (табл. 4).На этапе «укоренение in vitro» наибольшееколичество корней выявлено в вариантах ссодержанием в питательной среде QL ауксина ИМКв концентрации 0,5 мг/л и составило в среднем5,5 шт. Это в 1,7 и 2,8 раза больше, чем в вариантахс концентрациями 0,3 и 0,1 мг/л соответственно(табл. 5).Средняя длина корней жимолости приконцентрации ауксина ИМК 0,5 мг/л была в 2,3 разабольше, чем при концентрации 0,3 мг/л, и в 5,1 разабольше, чем при концентрации 0,1 мг/л (табл. 6). Взависимости от сорта различия были незначительны.Суммарная длина корней жимолости съедобнойпри содержании в питательной среде ауксина ИМКв концентрации 0,5 мг/л достигала 30,8 см на однорастение. Это почти в 4 раза больше, чем приТаблица 6. Средняя длина корней жимолости съедобной в зависимости от сорта и концентрации ауксина ИМК, смTable 6. Average length of roots honeysuckle depending on the variety and concentration of auxin IBA, cmСорт Концентрация ИМК, мг/л Среднее0,1 0,3 0,5Бокчарский великан 1,1 2,2 6,5 3,3Дочь великана 0,9 2,6 5,5 3,0Югана 1,0 2,5 4,9 2,8Boreal Beauty 1,2 2,1 5,0 2,8Boreal Beast 1,3 2,4 6,3 3,5Среднее 1,1 2,4 5,6 –НСР05 фактор А = 1,66, фактор В = 1,1, общ. = 0,88Таблица 4. Суммарная длина побегов жимолости съедобной в зависимости от сортаи концентрации цитокинина Цитодеф, смTable 4. Total length of honeysuckle shoots depending on the cultivar and concentration of cytokinin Cytodef, cmСорт Концентрация Цитодеф, мг/л Среднее0,1 0,3 0,5Бокчарский великан 3,7 33,5 27,5 21,6Дочь великана 5,7 38,1 23,5 22,4Югана 5,3 41,5 25,6 24,1Boreal Beauty 6,5 38,2 29,1 25,0Boreal Beast 5,4 49,5 31,3 29,0Среднее 5,3 40,1 27,4 –НСР05 фактор А = 3,21, фактор В = 2,81 общ. = 2,01Таблица 5. Количество корней жимолости съедобной в зависимости от сорта и концентрации ауксина ИМК, шт.Table 5. Amount of roots depending on the cultivar and concentration of auxin IBA, pcs.Сорт Концентрация ИМК, мг/л Среднее0,1 0,3 0,5Бокчарский великан 2,1 3,3 5,5 3,6Дочь великана 2,0 3,9 5,4 3,8Югана 1,9 3,0 5,8 3,6Boreal Beauty 1,8 2,9 6,0 3,6Boreal Beast 2,0 3,3 4,9 3,4Среднее 2,0 3,3 5,5 –НСР05 фактор А = 1,72, фактор В = 1,41, общ. = 0,98719Куликова Е. И. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2021. Т. 51. № 4 С. 712–722концентрации 0,3 мг/л, и в 14 раз больше, чем приконцентрации 0,1 мг/л (табл. 7).Существенных сортовых различий по количеству,средней и суммарной длине корней микрорастенийжимолости съедобной не выявлено.На этапе адаптации к нестерильным условиямin vivo отмечено, что приживаемость растенийжимолости съедобной всех исследуемых сортовбыла наибольшей при использовании кокосовогосубстрата (92–99 %). При использовании субстратов изверхового торфа и торфа с песком (1:3) приживаемостьимела низкие показатели – 23–28 и 34–40 %соответственно (табл. 8).У сортов канадской селекции наблюдалосьнаибольшее количество листьев (8,1–10,2 шт.) посравнению с сортами российской селекции (4,2–6,8шт.). По длине суммарного прироста значительныхразличий между растениями, в зависимости от сортаи субстрата, не отмечено.ВыводыВ результате проведенных исследованийустановлено, что на этапе введения в культуруin vitro максимальная жизнеспособность эксплантовжимолости съедобной российских (90–92 %) иканадских (80–94 %) сортов наблюдалась прииспользовании в качестве стерилизующих агентовЛизоформина 3000 (5 %) и AgNO3 при временистерилизации 10 мин. При содержании в питательнойсреде QL цитокинина Цитодеф в концентрации0,3 мг/л отмечены максимальные биометрическиепоказатели у побегов жимолости. Наибольшаясуммарная длина побегов (29,0 см) отмечена усорта жимолости Boreal Beast. Максимальныепоказатели количества, средней и суммарной длиныкорней микрорастений жимолости наблюдались придобавлении в питательную среду ауксина ИМК вконцентрации 0,5 мг/л. Существенных различий побиометрическим показателям корней жимолости, вТаблица 7. Суммарная длина корней жимолости съедобной в зависимости от сортаи концентрации ауксина ИМК, смTable 7. Total length of honeysuckle roots depending on the cultivar and concentration of auxin IBA, cmСорт Концентрация ИМК, мг/л Среднее0,1 0,3 0,5Бокчарский великан 2,3 7,3 36,0 15,2Дочь великана 1,8 10,1 28,1 13,4Югана 1,9 7,5 28,5 12,6Boreal Beauty 2,2 6,1 30,1 12,8Boreal Beast 2,6 8,0 31,1 13,9Среднее 2,2 7,8 30,8 –НСР05 фактор А = 4,32, фактор В = 3,12, общ. = 2,13Таблица 8. Приживаемость и биометрические показатели жимолости съедобной при адаптации к нестерильнымусловиям in vivo в зависимости от сорта и типа субстратаTable 8. Survival and biometric indices during adaptation to non-sterile conditions in vivo, depending on the culivar and type of substrateСубстрат Сорт Приживаемость,%Количество листьев,шт.Суммарный приростпобегов, смВерховой торф Бокчарский великан 26 5,60 ± 0,46 14,20 ± 0,66Дочь великана 24 6,10 ± 0,42 14,30 ± 0,71Югана 23 4,20 ± 0,34 13,90 ± 0,62Boreal Beauty 28 8,10 ± 0,51 14,50 ± 0,68Boreal Beast 27 8,40 ± 0,48 14,70 ± 0,72Торф + песок 1:3 Бокчарский великан 36 5,30 ± 0,38 14,20 ± 0,59Дочь великана 34 6,10 ± 0,42 14,40 ± 0,63Югана 37 6,30 ± 0,49 14,20 ± 0,61Boreal Beauty 40 8,80 ± 0,35 14,70 ± 0,63Boreal Beast 38 9,50 ± 0,55 14,60 ± 0,71Кокосовый субстрат Бокчарский великан 95 4,70 ± 0,36 14,50 ± 0,58Дочь великана 92 6,80 ± 0,45 14,40 ± 0,69Югана 94 5,80 ± 0,42 14,70 ± 0,65Boreal Beauty 98 10,20 ± 0,57 14,90 ± 0,74Boreal Beast 99 9,80 ± 0,51 15,10 ± 0,78720Kulikova E.I. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2021, vol. 51, no. 4, pp. 712–722зависимости от сорта, не выявлено. Максимальнаяприживаемость (92–99 %) адаптируемых кнестерильным условиям in vivo растений жимолостивыявлена при использовании кокосового субстрата.Наибольшее количество листьев (8,1–10,2 шт.) имелисорта канадской селекции.Критерии авторстваЕ. И. Куликова проводила закладку лабораторногоопыта на всех этапах клонального микроразмножения.С. С. Макаров руководил проектом, проводилзакладку лабораторного опыта на всех этапахклонального микроразмножения, проводил анализлитературных источников по вопросу использованиябиотехнологических способов размножения лесныхягодных растений. И. Б. Кузнецова проводила анализлитературных источников по вопросу использованиятрадиционных способов размножения жимолостисъедобной, закладку лабораторного опыта на этапеукоренения растений in vitro и статистическуюобработку данных. А. И. Чудецкий проводил анализлитературных источников по вопросу пищевой илекарственной ценности жимолости съедобной истатистическую обработку данных.Конфликт интересовАвторы заявляют об отсутствии конфликтаинтересов.БлагодарностиВыражаем благодарность д-р с.-х. наукС. А. Родину, канд. биол. наук Г. В. Тяк и канд. с.-х.наук И. А. Кореневу.