ВведениеЭффективным методом выращивания биофорти-фицированной баранины является обогащениерациона мелкого рогатого скота эссенциальныминутриентами. Основным преимуществом прижизнен-ного обогащения баранины является исключениериска отрицательного эффекта превышенияпотребления рекомендуемых суточных норм [1].Использование кормовых добавок «ДАФС-25»и «Йоддар-Zn», в основе которых растительныйкремний, органический йод и белково-углеводныйкомплекс, является одним из подходов к повышениюпродуктивности при выращивании мелкого рогатогоскота, а также способствует решению проблемыйоддефицитных заболеваний животных [2].Щитовидная железа сельскохозяйственныхживотных является уникальным органом. Онаобеспечивает гомеостаз организма за счетбиосинтеза тиреоидных гормонов и особого белка –тиреоглобулина – путем конденсации двух молекулдииодтирозина в молекулу тетраиодтиронина [3, 4].Связываясь со специфическими глобулинами крови,иодтиронины транспортируются клетками организма,где и проявляют свое действие. Иодтиронины влияютна скорость метаболизма и потребление кислородатканями. Это повышает интенсивность расщепленияуглеводов, жиров и белков в процессе обмена веществс освобождением большого количества энергии [5, 6].Йодированный казеин – активный белокщитовидной железы. Рейнеке и Тернерсообщили о его первом синтезе в 1942 г. [7, 8].Сегодня йодированный казеин, производимыйпромышленностью, используется в качестве добавкив корма для животных. Эффекты йодированногоказеина доказаны многими исследователями [9, 10].Когда йодированный казеин попадает в организмживотного, то он участвует в основном метаболизмеи стимулирует выделение тироксина щитовиднойжелезой [11, 12]. Это приводит к ускорению ростаживотных и увеличению их продуктивности [13].1 N.I. Vavilov Saratov State Agrarian University , Saratov, Russia2 V.M. Gorbatov Federal Research Center for Food Systems of RAS,Received: September 23, 2020 Moscow, RussiaAccepted: December 25, 2020*е-mail: a.kulikovskii@fncps.ru© T.M. Giro, A.V. Kulikovsky, A.S. Knyazeva, I.Yu. Domnitsky, A.V. Giro, 2020Abstract.Introduction. The present research featured biochemical and microstructural features of thyroid glands obtained from lambs raisedon various feeds enriched with essential elements. The article focuses on iodine as the most important physiologically activemicroelement. Iodine participates in the synthesis of thyroid hormones, namely thyroxine and triiodothyronine, which are known toregulate metabolic processes. Iodine deficiency may impair reproductive function and cause such diseases as endemic goiter.Study objects and methods. The study involved thyroid glands from lambs of the Edilbaev breed aged seven months. The lambs weredivided into four experimental groups, ten animals in each. The lambs received several feed additives. Ioddar-Zn and DAFS-25 hada balanced protein and carbohydrate content, while the mineral feed of Coretron brand contained such trace elements and minerals asiodine, selenium, and silicon.Results and discussion. The experiment made it possible to describe the microstructural profile of the thyroid glands extracted fromseven-month-old lambs raised on feeds enriched with iodine and selenium. Ioddar-Zn and DAFS-25 did not harm the structure of thethyroid tissue, while causing its functional activation in some cases. The morphological parameters of the thyroid glands indicatedsome breed differences. The iodine concentration in the thyroid glands obtained from the experimental animals was five or six timeshigher than that in the control group. The content of mono- and diiodotyrosine depended on the accumulation profile of organiciodine.Conclusion. Diets enforced with DAFS-25, Ioddar-Zn, silicon, and a protein-carbohydrate complex produced no negative effect on thestructure of the thyroid tissue. It fact, the diet increased the organic iodine content in the thyroid glands in the form of iodotyrosines.The gland structure revealed some cubic epithelium or follicular cells. The mass spectrometric studies confirmed the presence ofcovalently bound iodine in the form of mono- and diiodotyrosine. Thus, the abovementioned feed additives can be recommended forindustrial use.Keywords. Young animals, animal glands, biochemical characteristics, feed additives, essential trace elements, microstructuralstudiesFunding. The research was performed on the premises of N.I. Vavilov Saratov State Agrarian University (Saratov SAU) andfunded by the Russian Science Foundation (RSF) , grant No. 19-76-10013 “Development and implementation of technology forthe production and storage of ecologically safe lamb meat enriched with essential microelements”.For citation: Giro TM, Kulikovsky AV, Knyazeva AS, Domnitsky IYu, Giro AV. Biochemical and Microstructural Profile of theThyroid Gland from Lambs Raised on Experimental Diets. Food Processing: Techniques and Technology. 2020;50(4):670–680.(In Russ.). https://doi.org/10.21603/2074-9414-2020-4-670-680.672Giro T.M. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2020, vol. 50, no. 4, pp. 670–680Йод используется для синтеза гормонов щитовиднойжелезы – тироксина и трийодтиронина, играющихважную роль в регуляции метаболических процессов[14, 15]. Регуляция обмена йода в организмеосуществляется тиреотропным гормоном переднейдоли гипофиза. Йодная недостаточность проявляетсяпадением продуктивности и развитием эндемическогозоба в виде увеличения объема щитовиднойжелезы, а также нарушением воспроизводительнойфункции [16].Поскольку йодированный казеин не являетсячистым соединением, то его прямой анализ вобразцах затруднен. Однако гидролиз йодированногоказеина может привести к высвобождению гормоновщитовидной железы и других йодоаминокислот.Косвенный мониторинг йодированного казеина спомощью анализа этих характерных соединенийпрост [17]. Первой йодаминокислотой, выделенной изгидролизата йодированного казеина, был тиреоидныйгормон тироксин (Т4) [18]. Затем последовали3,3’,5-трийод-тиронин (T3), 3-монотирозин (МИТ)и 3,5-дииодтирозин (ДИТ) и 3,3’,5’-трийод-тиронин(rT3) и небольшое количество дийодотиронина (T2)[19, 20]. В недавнем исследовании было обнаружено,что содержание МИТ и ДИТ выше. Гидролитическаястабильность этих соединений выше, чем удругих йодоаминокислот, высвобождаемых изйодированного казеина [21]. Следовательно,МИТ и ДИТ являются подходящими целевымианалитами для мониторинга уровней йодированногоказеина [22].Селен является составным компонентомтаких ферментов, как глютатионредуктаза иглютатионпероксидаза. Биологическая роль селенаобусловлена его участием в регуляции образованияантиоксидантов. Существует тесная корреляциямежду уровнем в организме селена и активностьюселен-содержащего фермента глютатионпероксидазы,который предотвращает накопление в клеткахперекисных продуктов обмена веществ. Кроме того,селен и витамин Е дополняют эффекты друг друга.Они входят в структуру мембран клеток, где витаминЕ связан с арахидоновой килотой фосфолипидов, аселен связан с белками, содержащими «негеминовоежелезо», предохраняя его от окисления [23]. Селенспособствует нейтрализации перекисей жирныхкислот за счет активации глютатион-пероксидазы.Витамин Е предохраняет окисление жирных кислотмембран клеток, выполняя роль антиоксиданта.Цель научной работы – исследование влияниярационов мелкого рогатого скота, обогащенныхэссенциальными микроэлементами, на особенностибиохимических и микроструктурных характеристикщитовидной железы.Объекты и методы исследованияРазработаны кормовые добавки «Йоддар-Zn»(ТУ 10.91.10-252-10514645-2019) (табл. 1) и«ДАФС-25» (ТУ 10.91.10-253-10514645-2019)(табл. 2), содержащие эссенциальные микроэле-менты. Также кормовые добавки дополнительнообогащены белково-углеводным комплексом и мине-ральной подкормкой «Коретрон», в состав которыхвходят органические источники микроэлементови минералов (йода, селена, кремния). Состав исоотношение компонентов указаны в таблице 1 итаблице 2.Кормовая добавка «Йоддар-Zn» (Ioddar-Zn)используется для обогащения рационов сельскохо-зяйственных животных. Она является источникомбиодоступного йода в органической форме и цинка.«Йоддар-Zn» содержит в своем составе йодирован-ные белки молока в сочетании с соединениямицинка с аминокислотами, а также вспомогательныекомпоненты: лактоза, крахмал картофельныйи стеарат кальция. Эффективность даннойкормовой добавки подтверждена свидетельством огосударственной регистрации № ПВР-2-10.9/02488от 29.12.2009 г.«ДАФС-25» представляет собой органическоевещество – диацетофенонилселенид (ТУ 9337-001-26880895-96, свидетельство о гос. регистрации№ ПВР 2.04.0185-96) с массовой долей селенане менее 25 %. Являясь компонентом рационаживотных и птиц, способствует повышению общейрезистентности организма и продуктивностиживотных. «ДАФС-25» применяют для профилактикиТаблица 1. Состав кормовой добавки на основе«Йоддар-Zn», растительного кремнияи белково-углеводного комплексаTable 1. Feed additive based on Ioddar-Zn, plant silicon,and a protein-carbohydrate complexИнгредиент СодержаниеРастительный кремний (диотомит«Коретрон»), %1,0Кормовая добавка «Йоддар-Zn», % 1,0Белково-углеводный комплекс, %в том числе тыквенный жмых98,0020,00Таблица 2. Состав кормовой добавки на основе«ДАФС-25», растительного кремния и белково-углеводного комплексаTable 2. Feed additive based on DAFS-25, plant silicon,and a protein-carbohydrate complexИнгредиент СодержаниеРастительный кремний (диотомит«Коретрон»), %1,0Ветеринарный препарат «ДАФС-25»,мг/100г0,16Белково-углеводный комплекс, %в том числе: тыквенный жмых99,0020,00673Гиро Т. М. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2020. Т. 50. № 4 С. 670–680беломышечной болезни, токсической дистрофиипечени ягнят, поросят, телят, птицы, экссудативногодиатеза цыплят и других болезней, вызванныхселенистой недостаточностью.«Коретрон» – порошок серого цвета,состоящий из аморфного кремнезема биогенногопроисхождения. Представляет собой минеральнуюдобавку, применяемую при производствекомбикормов и премиксов для разных видовсельскохозяйственных животных и птиц. Онавыступает в качестве антислеживающего агента(адсорбента микотоксинов) и является источникомводорастворимого кремния (органическая форма),необходимого для стабильной работы гладкоймускулатуры желудочно-кишечного трактаживотных и птиц и улучшения усвоения кальция.Также отмечено его положительное влияние присистематическом употреблении на сокращениеколичества гельминтной инвазии из-за насыщенияорганизма аморфным кремнием [16].Исследования по определению эффективностискармливания кормовой добавки проводилина поголовье молодняка овец эдильбаевскойпороды в условиях УПП «Экспериментальноеживотноводство» ФГБОУ ВО «Саратовский госу-дарственный аграрный университет имени Н. И. Ва-вилова» (Саратовская область, Краснокутский район,г. Красный Кут). Для проведения опыта на поголовьемолодняка овец были сформированы 4 группыбаранчиков по 10 голов в каждой (контроль и опыт).Выращивание баранчиков осуществляли с 4-х до7-ми месяцев.Подбор животных осуществляли по методупар-аналогов. Все животные получали общехо-зяйственный рацион (ОР). Животные опытнойгруппы дополнительно к ОР получали предлагаемыекормовые добавки в количестве 1 %. Соотношениедобавок в рационе при совместном использовании«Йодар-Zn» и «ДАФС-25» составляло 1 к 1 илипо 1 % от массы корма. Продолжительностьопыта составляла 105 дней, а именно числеподготовительный период (10 дней), переходный(5 дней), главный (90 дней). Животные всех группсодержались в одинаковых условиях.Щитовидные железы извлекались методомтонкого препарирования. Были изучены ихбиохимические особенности, строение и изменениягистологической структуры от баранчиков четырехгрупп в зависимости от рациона.Микроэлементный состав исследовали поГОСТ EN 31707-2012 методом атомно-абсорбционной спектрометрии.Определение органической формы йодапроводили по ГОСТ 33422-2015 методом ВЭЖХс масс-спектрометрическим детектированием.Для определения иодированных аминокислот(МИТ и ДИТ) был использован метод жидкостнойквадрупольный масс-спектрометрии с ионизациейэлектроспрей. Исследования проводили на системеВЭЖХ «Agilent 1200» с масс-спектрометрическимдетектором «Agilent 6410». Подготовка пробвключала гидролиз протеолитическими фермента-ми и очистку гидролизата твердофазнойэкстракцией (ТФЭ). Перед проведением приборнойидентификации проводилась предколоночная дери-ватизация с бутанолом и ацетилхлоридом [24].Для проведения микроструктурных исследованийщитовидные железы фиксировали в 10 %-ном водномрастворе нейтрального формалина (100 мл 40 %формальдегида, 900 мл воды, карбонат кальция визбытке). Процесс осуществляли при комнатнойтемпературе в течение двух суток. После чего железыпромывали проточной водой в течение двух суток,обезвоживали спиртом восходящей концентрации(начиная с 50 до 96 %) и заливали в парафиновыеблоки. Срезы желез размером 5 мкм производилис помощью санного микротома, освобождалиот парафина и окрашивали гематоксилиномЭрлиха и эозином с последующим микроскопиро-ванием [25, 26].Результаты и их обсуждениеДана комплексная оценка биохимических имикроструктурных характеристик щитовиднойжелезы молодняка овец эдильбаевской породы,выращенных с использования рационов, включающихкормовые добавки на основе «ДАФС-25» и «Йоддар-Zn», растительного кремния и белково-углеводногокомплекса.Микроэлементный состав баранины от животныхразличных рационов откорма в возрасте 7 месяцевпредставлен в таблице 3.В баранине опытных животных, получавшихдобавку «ДАФС-25», наибольшее содержание селенаотмечено в I (286,30 ± 100,20 мкг/кг) и III (300,20 ±105,10 мкг/кг) группах, наименьшее количество –199,70 ± 69,90 мкг/кг в мясе контрольных животных.Таблица 3. Количественное содержание микроэлементов в мясе подопытных баранчиковTable 3. Trace elements in the meat of experimental lambsПоказатель ГруппыКонтрольная I опытная II опытная III опытнаяКремний (Si) 26,28 ± 2,61 29,26 ± 2,41 29,75 ± 2,91 30,75 ± 2,91Селен (Se), мкг/кг 199,70 ± 69,90 286,30 ± 100,20 253,40 ± 88,70 300,20 ± 105,10Цинк (Zn) 31,15 ± 2,21 31,15 ± 2,21 36,54 ± 3,17 36,54 ± 3,17674Giro T.M. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2020, vol. 50, no. 4, pp. 670–680Щитовидная железа играет важную рольв гормонально обусловленном поддержаниигомеостаза организма, являясь незаменимыморганом, меняющим валентность поступающего внеё йода с последующим синтезомйодсодержащихгормонов. Она сильно зависит от витаминно-микроэлементного состава рационов животных, т. е.от веществ, участвующих в непосредственнойрегуляции ее функционального состояния (I, Se, Mg,Cu, витамин B6). Таким образом, функциональноесостояние щитовидной железы позволяет судитьо полноценности рационов, а сама железасоответствует требованиям объекта подобныхисследований.Были проведены микроструктурные исследо-вания щитовидных желез с последующиммикроскопированием. На рисунках 1 и 2представлена щитовидная железа от животныхконтрольной группы. Структура щитовидной железыхарактеризуется наличием единичных большихфолликулов, выстланных кубическим эпителиеми заполненных гомогенной розоватой массой –коллоидом (рис. 1).На рисунке 2 хорошо заметны интерфол-ликулярные островки, а также резорбционныевакуоли.На рисунках 3 и 4 представлена щитовиднаяжелеза от животных, получавших добавку«Йоддар-Zn».Рисунок 1. Щитовидная железа от животных контрольнойгруппы. Единичные большие фолликулы. Окраскагематоксилином Эрлиха и эозином, ×300Figure 1. Thyroid gland from control animals: single large follicles;staining with Ehrlich’s hematoxylin and eosin, ×300Рисунок 2. Щитовидная железа от животных контрольнойгруппы. Резорбционные вакуоли. Окраска гематоксилиномЭрлиха и эозином, ×300Figure 2. Thyroid gland from control animals: resorptive vacuoles;staining with Ehrlich’s hematoxylin and eosin, ×300Рисунок 3. Щитовидная железа от животных, получавшихдобавку «Йоддар-Zn». Снижение количества фолликулов,заполненных коллоидом. Окраска гематоксилиномЭрлиха и эозином, ×300Figure 3. Thyroid gland from experimental animals fed with withIoddar-Zn: decrease in the number of follicles filled with colloid;staining with Ehrlich’s hematoxylin and eosin, ×300Рисунок 4. Щитовидная железа от животных, получавшихдобавку «Йоддар-Zn». Резорбционные вакуоли. Окраскагематоксилином Эрлиха и эозином, ×300Figure 4. Thyroid gland from experimental animals fed withIoddar-Zn: resorptive vacuoles; staining with Ehrlich’shematoxylin and eosin, ×300675Гиро Т. М. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2020. Т. 50. № 4 С. 670–680В щитовидной железе от животных, получавшихдобавку «Йоддар-Zn» выявляли снижение количествафолликулов, заполненных коллоидом (рис. 3).Фолликулярные тиреоциты несколько увеличеныв объеме. В фолликулах, сохранивших коллоид,отмечали крупные резорбционные вакуоли (рис. 4).Выявленные изменения в щитовидной железеот животных, получавших добавку «Йоддар-Zn», позволяют говорить об определеннойфункциональной активизации изучаемого органа.На рисунках 5 и 6 представлена щитовиднаяжелеза от животных, получавших добавку«ДАФС-25».На рисунке 5 показано, что интерфолликулярныеостровки представлены большими скоплениямикамбиальных или С-клеток.Щитовидная железа от животных, получавшихдобавку «ДАФС-25», характеризуется наличиемзначительного количества фолликулов, полностьюзаполненных коллоидом и имеющих в своем составенемногочисленные резорбционные вакуоли (рис. 6).На рисунках 7 и 8 представлена щитовиднаяжелеза от животных, получавших добавку «Йоддар-Zn + ДАФС-25».При изучении структуры щитовидной железыот животных, получавших добавку «Йоддар-ZnРисунок 5. Щитовидная железа от животных, получавшихдобавку «ДАФС-25». Крупные интерфолликулярныеостровки. Окраска гематоксилином Эрлиха и эозином, ×300Figure 5. Thyroid gland from experimental animals fed withDAFS-25: large interfollicular clusters; staining with Ehrlich’shematoxylin and eosin, ×300Рисунок 6. Щитовидная железа от животных, получавшихдобавку «ДАФС-25». Немногочисленные резорбционныевакуоли. Окраска гематоксилином Эрлиха и эозином, ×300Figure 6. Thyroid gland from experimental animals fedwith DAFS-25: few resorption vacuoles; staining with Ehrlich’shematoxylin and eosin, ×300Рисунок 7. Щитовидная железа от животных, получавшихдобавку «Йоддар-Zn + ДАФС-25». Фолликулярные клеткиплотно прилегают к базальной мембране.Окраска гематоксилином Эрлиха и эозином, ×300Figure 7. Thyroid gland from experimental animals fed with Ioddar-Znand DAFS-25: follicular cells adhere tightly to the basal membrane;staining with Ehrlich’s hematoxylin and eosin, ×300Рисунок 8. Щитовидная железа от животных, получавшихдобавку «Йоддар-Zn + ДАФС-25». Отдельныерезорбционные вакуоли и интерфолликулярные островки.Окраска гематоксилином Эрлиха и эозином, ×300Figure 8. Thyroid gland from experimental animals fed with Ioddar-Znand DAFS-25: separate resorption vacuoles and interfollicular clusters;staining with Ehrlich’s hematoxylin and eosin, ×300676Giro T.M. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2020, vol. 50, no. 4, pp. 670–680+ ДАФС-25», установлено наличие кубическогоэпителия или фолликулярных клеток, плотноприлегающих к базальной мембране каждогофолликула (рис. 7).Фолликулы имеют не крупные размеры,заполнены коллоидом с отдельными резорбционнымивакуолями. Интерфолликулярные островки имеютвид небольших скоплений среди достаточномассивных соединительно-тканных трабекул (рис. 8).Поведенные исследования позволили подтвердитьналичие йодтирозинов в щитовидной железеот животных, выращенных с использованиемразработанных добавок. Для определения степенийодирования был использован ферментативныйгидролиз комплексом протеолитических ферментов(папаин, панкреатин, протеаза) с последующеймасс-спектрометрической идентификацией. Порезультатам исследований определена массоваядоля ковалентно связанного йода в форме моно-и йодтирозинов. Значения количественногосодержания представлены в таблице 4.По результатам исследований выявлено, чтонаибольшая концентрация йода зафиксированав I и III группах и составила 54,6 ± 6,8 и 61,5 ±9,6 мкг/кг соответственно. Это выше, по сравнениюс контрольной группой, в 5 и 6 раз. Стоит учесть,что различный профиль накопления органическогойода в форме МИТ и ДИТ. В I группе содержаниеМИТ составило 78,4 ± 9,5 мкг/кг, а в III группе –107,8 ± 15,7. Содержание ДИТ, в зависимости отгруппы, находится в пределах погрешности 52,3 ± 6,7и 46,2 ± 7,8 мкг/кг для I и III групп соответственно.Доля ковалентно связанного йода в форме МИТв щитовидной железе животных, получавших врационах добавку «Йоддар-Zn» составила 27,4 ±3,3 мкг/кг (выше, по сравнению с контролем, на20,3 мкг/кг). В баранине от животных, получавшихдобавку «Йоддар-Zn + ДАФС-25», содержаниековалентно связанного йода было 37,5 ± 5,5 мкг/кг,что выше, чем в контроле, на 30,4 мкг/кг.Доля ковалентно связанного йода в форме ДИТв щитовидной железе животных, получавших врационах добавку «Йоддар-Zn», составила 27,2 ±3,5 мкг/кг (выше, чем в контроле, на 22,5 мкг/кг). Вщитовидной железе животных, получавших добавку«Йоддар-Zn + ДАФС-25», содержание ковалентносвязанного йода составило 24,0 ± 4,1 мкг/кг, чтовыше, чем в контроле, на 19,3 мкг/кг.ВыводыАнализ проведенных исследований позволяетсделать вывод, что использование в рационахкормовых добавок «ДАФС-25» и «Йоддар-Zn» привыращивании баранчиков не имеет отрицательныхпоследствий для структуры ткани щитовиднойжелезы, вызывая некоторую функциональнуюактивизацию органа. Это подтверждается микро-структурными характеристиками (увеличениечисла фолликулов, их размеров, степень заполненияколлоидом), что морфологически характеризуетактивность железы. Динамика изменений структурыщитовидной железы эдильбаевской породыбаранчиков имеет свои особенности.При изучении структуры щитовидной железыот животных, получавших добавку «Йоддар-Zn+ ДАФС-25», установлено наличие кубическогоэпителия или фолликулярных клеток, плотноприлегающих к базальной мембране каждогофолликула. Это позволяет утверждать о возможностиприменения указанных кормовых добавок в периодпромышленного выращивания животных.По результатам исследований удалось коли-чественно идентифицировать йод в органи-ческой форме (в виде йодтирозинов) в биофортифи-цированном мясном сырье. Именно органическаяформа йода позволяет проявлять различныебиологические свойства через йодсодержащиегормоны тироксин и трийодтиронин, которыеучаствуют в регулировании метаболическихпроцессов в живом организме.Исследованиями подтверждено, что содержаниейода и селена в щитовидной железе баранчиковнаходится в прямой зависимости от содержания этихмикроэлементов в рационах. При этом значительнаяих локализация зафиксирована в щитовидной железеТаблица 4. Результаты определения йодтирозинов и массовой доли ковалентно связанного йода в щитовидной железеот животных, выращенных с использованием обогащенннных рационнновTable 4. Iodotyrosines and mass fraction of covalently bound iodine in thyroid glands from animals raised on experimental dietsПоказатель НД наметодикуКонтрольнаягруппаI группа(«Йоддар-Zn»)II группа(«ДАФС-25»)III группа («Йоддар-Zn» + «ДАФС-25»)3-йодтирозин (МИТ), мкг/кг ГОСТ33422-201520,3 ± 4,5 78,4 ± 9,5 23,3 ± 3,8 107,8 ± 15,73,5-дийодтирозин (ДИТ), мкг/кг 9,0 ± 1,5 52,3 ± 6,7 13,2 ± 2,1 46,2 ± 7,8Доля ковалентно связанного йодав форме МИТ, мкг/кгГОСТ33422-20157,1 ± 1,6 27,4 ± 3,3 8,1 ± 1,3 37,5 ± 5,5Доля ковалентно связанного йодав форме ДИТ, мкг/кг4,7 ± 0,8 27,2 ± 3,5 6,9 ± 1,1 24,0 ± 4,1Йод (суммарное содержание), мкг/кг 11,8 ± 2,4 54,6 ± 6,8 15,0 ± 2,4 61,5 ± 9,6677Гиро Т. М. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2020. Т. 50. № 4 С. 670–680баранчиков III опытной группы, выращенной сиспользованием добавки «Йоддар-Zn + ДАФС-25».Использование минеральных добавок в рационахмелкого рогатого скота является перспективным иактуальным и позволяет добиться значительногонакопления органических микроэлементов в органахи тканях животных.Критерии авторстваТ. М. Гиро обеспечивала выполнение исследо-ваний лабораторией, контролировала постановкуэксперимента по выращиванию животных.А. В. Куликовский руководил проектом, отвечалза анализ полученных данных, написание иредактирование текста публикации. А. С. Князевапроводила хромато-масс-спектрометрические иссле-дования. И. Ю. Домницкий проводил консультациипо вопросам морфологии и патология животных.А. В. Гиро отвечала за проведение гистологическихисследований.Конфликт интересовАвторы заявляет об отсутствии конфликтаинтересов.ContributionT.M. Giro was responsible for the laboratory researchand supervised the experimental diet experiment.A.V. Kulikovsky was in charge of the project, the dataanalysis, and the manuscript. A.S. Knyazeva performedthe chromatography studies. I.Yu. Domnitsky consultedon the morphology and pathology of the animals.A.V. Giro conducted the histological studies.Conflict of interestThe authors declare that there is no conflict of interestregarding the publication of this article.